Tạp chí Khoa học - Cơng nghệ Thủy sản - số 03/2008
VẤN ĐỀ NGHIÊN CỨU

ẢNH HƯỞNG CỦA HÀM LƯỢNG NITƠ KHÁC NHAU LÊN SỰ PHÁT TRIỂN CỦA
TẢO CHAETOCEROS GRACILIS PANTOCSEK 1892 (SCHÜTT)
EFFECTS OF DIFFERENT NITROGEN CONCENTRATIONS ON THE GROWTH OF ALGAE
POPULATION Chaetoceros gracilis Pantocsek 1892 (Schütt)

Tôn Nữ Mỹ Nga
Khoa Nuôi trồng Thủy sản - Trường Đại học Nha Trang
Tóm tắt
Việc xác định hàm lượng nitơ tối ưu là rất cần thiết cho việc ương ni sinh khối tảo Chaetoceros
gracilis.
Thí nghiệm 20 ngày được thực hiện với 6 lô ở các hàm lượng nitơ bổ sung 2,41 mg/l; 7,41 mg/l;
12,41 mg/l ; 17,41 mg/l; 22,41 mg/l và 27,41 mg/l với 3 lần lặp lại. Tổng số bình thí nghiệm là 18.
Điều kiện thí nghiệm: mơi trường dinh dưỡng là f2 (khơng có nitơ), độ mặn 15 ppt, mật độ tảo ban
đầu là 10 vạn tb/ml, cường độ ánh sáng 3300 lux, nhiệt độ 27oC, thời gian chiếu sáng 12 giờ/ngày, sục
khí liên tục 24/24 giờ.
Kết quả cho thấy khi hàm lượng nitơ bổ sung tăng từ 2,41 mg/l đến 17,41 mg/l thì mật độ tảo
cũng tăng lên và đạt cao nhất ở lơ bổ sung 17,41 mg/l nitơ nhưng sau đó lại giảm ở lô bổ sung 22,41
và 27,41 mg/l nitơ, Mật độ cực đại và mật độ trung bình khác nhau khơng có ý nghĩa giữa 4 lơ thí
nghiệm có hàm lượng nitơ bổ sung 12,41; 17,41; 22,41; 27,41 mg/l (p > 0,05) nhưng khác nhau có ý
nghĩa giữa 4 lơ trên với 2 lơ có hàm lượng nitơ bổ sung 7,41 và 2,41 mg/l (p < 0,05). Vậy, hàm lượng
nitơ bổ sung thích hợp và tiết kiệm đối với sự phát triển của tảo C. gracilis là từ 12,41 đến 17,41 mg/l.
Abstract
Identifying the optimum nitrogen concentration is very necessary for biomass culture of algae
Chaetoceros gracilis.
20-day experiment was carried out with 6 treatments at supplemented nitrogen concentrations
2.41 mg/l, 7.41 mg/l, 12.41 mg/l, 17.41 mg/l, 22.41 mg/l and 27.41 mg/l with 3 replicates. The total
number of experiment conical flasks was 18.
Experiment conditions: medium f2 (without nitrogen), salinity 15 ppt, initial density 100

thousands cells/ml, light intensity 3300 lux, temperature 27oC, light duration 12 hours/day, continuous
aeration 24/24.
The results showed that when supplemented nitrogen concentration increased from 2.41 mg/l to
17.41 mg/l, algae densities also increased and reached to the higest densities at 17.41 mg nitrogen/l
but decreased at the treatments with 22.41 and 27.41 mg/l of supplemented nitrogen. The difference
in maximum and mean densities between 4 treatments of 12.41, 17.41, 22.41, 27.41 mg/l were
insignificant statistically (p > 0.05) but significant statistically (p < 0,05) compared with those of the
others (7.41 and 2.41 mg/l ones). So, suitable and economic supplemented nitrogen concentrations for
C. gracilis’s growth were from 12.41 to 17.41 mg/l.
I. MỞ ĐẦU
Sau cacbon, nitơ là nguyên tố dinh dưỡng

cần thiết cho quá trình sinh tổng hợp và phát
triển của tảo. Hàm lượng nitơ của tảo có thể

quan trọng nhất đóng góp đến việc sản xuất
sinh khối tảo. Nitơ là thành phần cần thiết của

dao động từ 1% đến hơn 10% và nó khơng chỉ
khác nhau giữa các lồi (ví dụ: thấp ở các lồi

tất cả các protein chức năng và protein cấu

tảo silic) mà còn thay đổi trong nội bộ một loài,

trúc trong các tế bào tảo [6], tham gia cấu tạo
nên các loại vitamin như B1, B2, B6, BP… rất

tùy vào nguồn cấp và hàm lượng có sẵn trong
nguồn nước ni tảo [4].


9


Tạp chí Khoa học - Cơng nghệ Thủy sản - số 03/2008
Trong công nghệ sinh học tảo, để đạt

o

Sanyo của Nhật, ở nhiệt độ 120 C, áp suất 1,5

được sản lượng cao trong nuôi sinh khối, cần
phải đảm bảo cung cấp đầy đủ chất dinh

at trong thời gian 15 phút.
2.2.2. Vệ sinh các dụng cụ nuôi

dưỡng quan trọng này. Hiện nay, người ta
nuôi tảo C. gracilis cũng chỉ mới dựa trên hàm

Các dụng cụ như cốc đốt, pipet, xi ranh,
bông gịn, mơi trường ni (trừ vitamine), dây

lượng nitơ có trong các mơi trường dinh

sục khí đều được vơ trùng bằng nồi thanh

dưỡng đã được lập công thức sẵn dùng chung
cho nhiều lồi tảo khác nhau. Vì vậy, việc xác


trùng ở nhiệt độ 120 C; áp suất 1,5 at trong
thời gian 15 phút.
2.3. Bố trí thí nghiệm

định hàm lượng nitơ tối ưu cho sự phát triển
của quần thể tảo này là cần thiết.
II. PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU
2.1. Đối tượng nghiên cứu và địa điểm
nghiên cứu
2.1.1. Đối tượng nghiên cứu
Loài tảo Chaetoceros gracilis Pantocsek
1892 (Schütt) nhập từ Úc do Viện Nghiên cứu
Nuôi trồng Thuỷ sản III cung cấp.
2.2.2. Địa điểm nghiên cứu
- Viện Công nghệ Sinh học và Môi
trường, Trường Đại học Nha Trang (thí
nghiệm về hàm lượng nitơ).
- Phân viện Khoa học Vật liệu Nha Trang
(phân tích hàm lượng nitơ, phơtpho, silic trong
nước biển tự nhiên).
2.2. Chuẩn bị các dụng cụ thí nghiệm
2.2.1. Nguồn nước
Nguồn nước biển được lấy ở vùng biển
Hòn Đỏ (vịnh Nha Trang) khi thủy triều cao
nhất. Nước biển sau khi qua bể lắng, được lọc
bằng túi siêu lọc 5 µm và 1 µm và được xử lý
chlorin 20 - 25 ppm trước khi sử dụng cho các
thí nghiệm. Nước biển sau khi xử lý chlorine
+
có độ mặn 30 ppt, có hàm lượng NO3 và NH4

là 2,8 và 0,7 ppm, tương ứng với hàm lượng
3-

nitơ là 0,63 và 0,54 ppm; hàm lượng PO4 là
1,8 ppm, tương ứng với hàm lượng phôtpho là
0,59 ppm; hàm lượng silic là 3,51 ppm.
Nước sử dụng cho lưu giữ giống và thí
nghiệm: sau khi xử lý bằng chlorin được cho
vào bình thủy tinh hình tam giác có dung tích
1000 ml mỗi bình. Sau đó, bình được đậy kín
bằng nút, phủ kín bằng giấy nhôm và đưa vào
vô trùng bằng nồi thanh trùng (autoclave), hiệu

10

o

Sáu lơ thí nghiệm được thực hiện ở các
hàm lượng nitơ bổ sung: 2,41 mg/l; 7,41 mg/l;
12,41 mg/l (hàm lượng chuẩn của môi trường
f2); 17,41 mg/l; 22,41 mg/l và 27,41 mg/l. Thí
nghiệm được lặp lại 3 lần. Tổng số bình thí
nghiệm là 18.
Điều kiện ni:
Mơi trường ni: f2
Độ mặn: 15 ppt
Mật độ ban đầu: 10 vạn tb/ml
Cường độ ánh sáng: 3300 lux
o


Nhiệt độ: 27 C
Thời gian chiếu sáng: 12 giờ/ngày
Sục khí liên tục 24/24 giờ
2.4. Phương pháp xác định các chỉ tiêu
2.4.1. Xác định mật độ tế bào
- Mẫu tảo được lấy 1 lần trong ngày vào
lúc 8 giờ sáng.
- Lượng mẫu tảo được lấy là 4 ml/lần.
- Mật độ tế bào được xác định bằng 2
phương pháp:
+ Buồng đếm hồng cầu hiệu Thoma
2

của Nhật có diện tích 1 mm , độ sâu 0,1 mm.
+ Độ hấp phụ ánh sáng của dung dịch
tảo được xác định trên máy quang phổ tử
ngoại khả kiến (Spectrophotometer) DR/4000
U hiệu Hach, model ocma–310 của Nhật.
2.4.2. Đo kích thước tế bào
Tảo được đo bằng kính hiển vi có gắn trắc
vi thị kính của Nhật hiệu Olympus BX 41, Serial
2K07583, dưới vật kính 100, thị kính 12. Mẫu
tảo đo tế bào là mẫu tảo tươi, có màu sắc tốt.
Số lượng tế bào được đo: 30 tế bào/bình 1000
ml. Đo trục cao và đường kính của tế bào tảo.


Tạp chí Khoa học - Cơng nghệ Thủy sản - số 03/2008
Cơng thức tính thể tích tế bào tảo: Tế bào
tảo Chaetoceros gracilis có dạng hình trụ, đáy


Trong đó, V : thể tích
B : diện tích đáy
R : bán kính

trịn nên cơng tính theo cơng thức sau:
V=Bxh

h : trục cao

B=πxR

2

Bán kính (R)
Trục cao (h)

2.4.3. Đo pH
pH của dung dịch tảo được đo bằng máy
đo pH 744, hiệu Metrohm, của Nhật với độ
chính xác 0,01. Đo mỗi ngày một lần vào lúc 8
giờ sáng.
2.4.4. Đo độ mặn
Độ mặn của nước biển ni tảo được
kiểm tra trước khi bố trí thí nghiệm bằng khúc

III. KẾT QUẢ NGHIÊN CỨU VÀ THẢO LUẬN
Nhìn chung, nitơ chiếm khoảng 7 - 10%
khối lượng khô tế bào, là một thành phần cần
thiết của tất cả các protein chức năng và

protein cấu trúc trong các tế bào tảo [6], là
chất dinh dưỡng quan trọng nhất sau cacbon
đối với việc sản xuất sinh khối. Trong công

xạ kế (refractometer) của Nhật.

nghệ sinh học tảo, để có thể đạt được sản
lượng cao, cần cung cấp đầy đủ chất dinh

2.5. Xử lý số liệu

dưỡng này, mà trước hết cần hiểu rõ nhu cầu

Các thơng số (giá trị trung bình, độ lệch
chuẩn) được tính tốn bằng chương trình
EXCEL 2000 (hàm AVERAGE, hàm STDEV).
Các giá trị mật độ cực đại, mật độ trung bình,

của tảo đối với chúng.
Thí nghiệm về hàm lượng nitơ bổ sung
được thực hiện ở độ mặn 15ppt, tương ứng
với lượng nitơ sẵn có trong nước biển từ
-

+

bằng phần mềm SPSS (ANOVA một yếu tố, so

nguồn NO3 và NH4 là 0,32 và 0,27 mg/l. Kết
quả thí nghiệm được trình bày ở bảng 1, bảng


sánh LSD).

2, bảng 3 và hình 1.

kích thước tế bào được kiểm định thống kê

Bảng 1. Khoảng biến thiên của pH trong thí nghiệm
Hàm lượng nitơ
bổ sung (mg/l)
pH

2,41

7,41

12,41

17,41

22,41

27,41

7,52- 9,44

7,49- 9,46

7,62- 9,44


7,60- 9,48

7,62- 9,5

7,59- 9,56

Nhìn chung, giá trị pH có xu hướng tăng dần khi hàm lượng nitơ bổ sung tăng dần nhưng không
khác nhau nhiều giữa các lô thí nghiệm. pH có khi vượt cao hơn 9 vào những ngày đạt mật độ cực
đại nhưng không ảnh hưởng xấu đến tảo.

11


Tạp chí Khoa học - Cơng nghệ Thủy sản - số 03/2008
Bảng 2. Ảnh hưởng của hàm lượng nitơ bổ sung lên kích thước tế bào C. gracilis
Kích thước
N bổ sung

Chiều cao (µm)

Đường kính (µm)

3

Thể tích (µm )

2,41 mg/l

5,71 ± 0,23


a

7,31 ± 0,21

a

250,59 ± 24,38

a

7,41mg/l

5,79 ± 0,36

a

7,47 ± 0,19

a

259,86 ± 12,91

a

12,41 mg/l

5,47 ± 0,6

7,23 ± 0,13


a

229,48 ± 32,81

a

17,41 mg/l

5,58 ± 0,42

a

7,37 ± 0,15

a

242,34 ± 27,3

22,41 mg/l

5,61 ± 0,49

a

7,53 ± 0,27

a

260,68 ± 49,73


a

27,41 mg/l

5,36 ± 0,13

a

7,56 ± 0,24

a

243,66 ± 11,25

a

a

a

+ Số liệu trình bày ở bảng 2 là giá trị trung bình ± độ lệch chuẩn (SD). Chữ cái viết kèm bên trên minh hoạ
cho sự khác nhau có ý nghĩa về mặt thống kê (p > 0,05).

Bảng 2 cho thấy khi hàm lượng nitơ bổ
sung thay đổi, kích thước tế bào tảo C. gracilis

biệt là pha cân bằng kéo dài rất lâu. Điều này

có thay đổi. Tuy nhiên, kết quả kiểm định


cũng trùng hợp với nhận xét của Hu (2004) [6]:
khi hàm lượng nitơ xuống thấp hơn giá trị

thống kê cho thấy sự khác nhau khơng có ý
nghĩa giữa các lơ thí nghiệm (p > 0,05). Điều

ngưỡng, sự quang tổng hợp vẫn tiếp tục, mặc
dù với tốc độ thấp.

này cũng phù hợp với kết quả nghiên cứu của

Nhiều nghiên cứu cũng cho thấy rằng

Hồng Thị Bích Mai (1995) [3] ở tảo silic
Skeletonema costatum và Chaetoceros sp.,

trong điều kiện đầy đủ nitơ, tế bào có khả
năng sản xuất chất dự trữ nitơ nhưng khi sống

của Hà Lê Thị Lộc (2000) [2] ở tảo Tetraselmis
sp., của Nguyễn Thị Hương (2001) [1] đối với

trong điều kiện thiếu nitơ thì dịng cacbon
được cố định trong quá trình quang hợp sẽ

tảo C. calcitrans.
Hình 1 và bảng 3 cho thấy rằng mặc dù ở

chuyển hướng từ con đường tổng hợp protein
sang con đường tổng hợp lipid hay


mức nitơ bổ sung rất thấp 2,41 và 7,41 mg/l

carbohydrate [6], [9]. Chính vì vậy mà khi hàm

nhưng q trình quang hợp vẫn xảy ra, tảo
vẫn phát triển (cho dù là với mật độ thấp), đặc

lượng nitơ rất thấp, tảo vn phỏt trin c
(vi mt thp).

600

Mật độ tế bào
(x v¹n tb/ml)

500
400
300
200
100
0
1

2

2 ,4 1 m g /l
1 7 ,4 1 m g /l

3


4

5

6

7

7 ,4 1 m g /l
2 2 ,4 1 m g /l

8

9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20
1 2 ,4 1 m g /l
2 7 ,4 1 m g /l

T h ê i g ia n ( n g µ y )

Hình 1. Ảnh hưởng của hàm lượng nitơ bổ sung
khác nhau lên sự phát triển của tảo Chaetoceros gracilis

12


Tạp chí Khoa học - Cơng nghệ Thủy sản - số 03/2008
Bảng 3. Ảnh hưởng của hàm lượng nitơ bổ sung khác nhau
lên sự phát triển của tảo Chaetoceros gracilis
Ng

1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
TB

Hàm lượng Nitơ bổ sung
2,41 (mg/l)

7,41 (mg/l)

12,41 (mg/l)

10,00 ± 0,00

10,00 ± 0,00
10,00 ± 0,00
23,45 ± 1,48
17,11 ± 1,71
17,49 ± 1,80
74,79 ± 2,57
66,53 ± 2,57
64,93 ± 6,98
108,62 ± 4,23 147,24 ± 17,26 131,52 ± 14,78
111,81 ± 9,42 191,19 ± 33,88 180,27 ± 36,01
112,88 ± 6,41 205,31± 28,60 204,51 ± 40,41
111,28 ± 9,86 205,31 ± 31,92 232,48 ± 43,42
115,01 ± 10,57 219,96 ± 18,95 279,09 ± 32,05
118,21 ± 13,65 224,22 ± 24,76 297,73 ± 38,84
128,33 ± 10,40 236,74 ± 21,24 321,71 ± 44,06
133,39 ± 13,65 248,46 ± 18,43 352,34 ± 50,78
133,79 ± 13,60 250,99 ± 13,78 365,66 ± 43,16
134,19 ± 13,58 253,52 ± 9,33 378,98 ± 37,49
136,59 ± 14,80 255,65 ± 12,07 393,09 ± 29,60
128,86 ± 13,19 254,32 ± 9,67 393,09 ± 30,37
158,16 ± 14,14 282,02 ± 7,87 412,80 ± 28,60
c
b
167,75 ± 9,08
288,5 ± 4,10
433,31 ± 21,62
a
158,96 ± 9,22
284,15 ± 3,78 443,97 ± 30,26
149,37 ± 13,20

269,77 ± 3,03
433,58 ± 29,62
c

116,60 ± 8,61

b

205,82 ± 13,04

281,40 ± 21,5

a

17,41 (mg/l)

22,41 (mg/l)

27,41 (mg/l)

10,00 ± 0,00
18,42 ± 3,92
62,27 ± 8,30
142,98 ± 38,23
207,97 ± 61,87
250,32 ± 65,99
258,58 ± 54,08
298,80 ± 42,80
319,04 ± 34,96
348,08 ± 13,19

383,24 ± 22,61
392,29 ± 27,20
401,35 ± 33,36
428,25 ± 11,27
428,79 ± 12,44
448,76 ± 19,81
466,34 ± 11,64
a
476,64 ± 4,10
465,54 ± 14,41

10,00 ± 0,00
25,69 ± 4,03
86,78 ± 19,18
155,23 ± 24,11
200,51 ± 36,10
221,02 ± 49,80
230,08 ± 59,52
271,36 ± 86,55
290,81 ± 95,60
316,65 ± 96,83
351,27 ± 112,04
368,32 ± 108,81
385,37 ± 105,60
402,68 ± 106,40
410,67 ± 111,87
431,72 ± 101,77
451,69 ±101,95
a
473,53±106,70

469,01 ±103,26
460,75 ± 98,47
a
300,66 ± 75,56

10,00 ± 0,00
20,10 ± 1,48
78,25 ± 8,46
142,98 ± 24,46
201,31 ± 46,37
222,35 ± 38,54
226,08 ± 35,58
256,45 ± 19,64
263,37 ± 15,04
288,15 ± 20,30
310,52 ± 23,56
324,37 ± 29,24
338,22 ± 36,10
354,74 ± 48,03
354,74 ± 54,53
376,84 ± 51,24
396,29 ± 64,46
418,93 ± 62,37
a
421,06 ± 57,61
414,93 ± 61,95
a
270,98 ± 19,35

305,66 ± 22,89


a

4

+ Số liệu trình bày ở bảng 3 là giá trị trung bình ± độ lệch chuẩn (SD) (vạn tb/ml hoặc x 10 tb/ml). Chữ cái
viết kèm bên trên minh hoạ cho sự khác nhau có ý nghĩa về mặt thống kê (p < 0,05).

Ở lơ tảo có hàm lượng nitơ bổ sung thấp

cực đại và mật độ trung bình (288,15 ± 4,10

2,41 mg/l, tảo có màu vàng úa. Đây cũng là

vạn tb/ml và 205,82 ± 13,04 vạn tb/ml; 443,97

phản ứng đặc trưng đối với sự hạn chế nitơ do tế
bào tảo bị giảm về hàm lượng chlorophyll và

± 30,26 vạn tb/ml và 281,40 ± 21,5 tb/ml;
476,64 ± 4,1 tb/ml và 305,66 ± 22,89 vạn

carotenoid [4].
Kết quả này cũng tương tự như kết quả

tb/ml) tăng dần lên. Trong đó, lơ có hàm lượng
nitơ bổ sung 17,41 mg/l có mật độ cực đại và

nghiên cứu của La Roche và ctv (1993) [7] đối
với tảo silic Phaeodactylum tricornutum Bohlin


mật độ trung bình cao nhất. Tuy nhiên, ở các
lơ có hàm lượng nitơ cao hơn (22,41mg/l và

được ni trong mơi trường nước biển nhân

27,41 mg/l) thì mật độ cực đại và mật độ trung

tạo và môi trường f2 thiếu nitơ là: đều xuất
hiện bệnh úa vàng.

bình (473,53 ± 106,70 vạn tb/ml và 300,66 ±
75,56 vạn tb/ml; 421,06 ± 57,61 vạn tb/ml và

Hình 1 và bảng 3 cũng cho thấy trong
suốt tồn bộ chu kỳ ni, lơ có hàm lựơng nitơ

270,98 ± 19,35 vạn tb/ml) lại giảm xuống.
Như vậy, khi hàm lượng nitơ bổ sung

bổ sung thấp nhất 2,41 mg/l cũng có mật độ
cực đại và mật độ trung bình (167,75 ± 9,08

tăng trong khoảng từ 2,41 mg/l đến 17,41 mg/l
thì mật độ tảo cũng tăng lên. Hàm lượng nitơ

vạn tb/ml và 116,6 ± 8,61 vạn tb/ml) thấp nhất.

bổ sung càng cao thì mật độ tảo cũng càng


Tiếp theo là các lơ có hàm lượng nitơ bổ sung
7,41 mg/l, 12,41 mg/l, 17,41 mg/l với mật độ

cao. Tuy nhiên, khi hàm lượng nitơ bổ sung
tăng lên vượt hơn 17,41 mg/l, tức ở mức

13


Tạp chí Khoa học - Cơng nghệ Thủy sản - số 03/2008
22,41 và 27,41 mg/l, thì mật độ tảo khơng tăng

Pauw và ctv (1983) [8] thì nhu cầu về đạm của

thêm được nữa mà cịn có xu hướng giảm.
Thời gian đạt cực đại ở lô bổ sung 27,41 mg

tảo khuê thấp hơn so với tảo lục và tảo lam. Ở

nitơ/l cũng chậm hơn so với 5 lơ có hàm lượng
nitơ bổ sung thấp hơn. Kết quả kiểm định
thống kê về mật độ cực đại và mật độ trung
bình cho thấy sự kh¸c nhau khơng có ý nghĩa
giữa 4 lơ thí nghiệm có hàm lượng nitơ bổ
sung 12,41; 17,41; 22,41; 27,41 mg/l (p >
0,05) nhưng sự khác nhau có ý nghĩa giữa 4 lơ
trên với 2 lơ có hàm lượng nitơ bổ sung 7,41
và 2,41 mg/l (p < 0,05). Vậy, hàm lượng nitơ

cường độ ánh sáng 2000 lux, Scenedesmus

phát triển tốt nhất ở hàm lượng đạm 20 mg/l,
Nitzchia paka phát triển tốt nhất ở hàm lượng
đạm 5-10 mg/l, trong khi Chlorella phát triển tốt
nhất ở hàm lượng đạm 57 mg/l (Mudresop,
1953. Trích theo Hồng Thị Bích Mại (1995) [3]).
IV. KẾT LUẬN VÀ ĐỀ XUẤT Ý KIẾN
- Với hàm lượng nitơ bổ sung vào nước
biển thí nghiệm từ 2,41 đến 27,41 mg/l thì tảo

bổ sung thích hợp và tiết kiệm đối với sự phát
triển của tảo C. gracilis là từ 12,41 đến 17,41

Chaetoceros gracilis phát triển tốt nhất ở hàm

mg/l. Kết quả kiểm định thống kê cho thấy thời

lượng nitơ bổ sung 12,41 mg/l và 17,41 mg/l.

gian đạt cực đại giữa 2 lơ 12,41 đến 17,41
mg/l này khác nhau khơng có ý nghĩa (p >

Hàm lượng này vừa đảm bảo cho tảo phát

0,05).
Đối với tảo C. calcitrans, hàm lượng nitơ
bổ sung tối ưu là 6,69 - 12,69 mg/l [1]. Theo

triển tốt nhất vừa đảm bảo tiết kiệm.
- Cần nghiên cứu thêm về ảnh hưởng của
hàm lượng nitơ lên chất lượng của tảo nuôi.


TÀI LIỆU THAM KHẢO
1. Nguyễn Thị Hương (2001), Nghiên cứu ảnh hưởng của một số yếu tố sinh thái lên sự phát triển
của quần thể tảo Chaetoceros calcitrans Paulsen, 1905 nhập nội, Luận văn Thạc sĩ, Đại học Thuỷ
sản, Nha Trang.
2. Hà Lê Thị Lộc (2000), Ảnh hưởng của một số yếu tố sinh thái lên sự phát triển của tảo Tetraselmis
sp. và thử nghiệm ni sinh khối hai lồi tảo Tetraselmis sp. và Nannochloropsis oculata (Droop)
Hibberd, 1981 tại Nha Trang, Luận văn Thạc sĩ, Đại học Thuỷ sản, Nha Trang.
3. Hồng Thị Bích Mai (1995), Sinh sản, sinh trưởng và cơ sở khoa học của qui trình kỹ thuật nuôi
thu sinh khối tảo Silic Skeletonema costatum Greville cleve, Chaetoceros sp. làm thức ăn cho ấu
trùng tôm sú Penaeus monodon Fabricius, Luận văn Thạc sĩ, Đại học Thuỷ sản, Nha Trang.
4. Becker E.W. (1994), Microalgae: Biotechnology and microbiology, Cambridge University Press, UK.
5. Guillard R.R.L. (1975), “Culture of phytoplankton for feeding marine invertebrates”, Culture of
marine invertebrate animals , pp. 29-60.
6. Hu Q. (2004), “Environmental effects on cell composition”, Handbook of Microalgae Culture:
Biotechnology and Applied Phycology , pp: 83-93.
7. La Roche J., Geider R.J., Graziano L.M., Murray H. & Lewis K. (1993), “Induction of specific
proteins in Eukaryotic algae grown under iron-, phosphorus-, or nitrogen-deficient conditions”,
Journal of Phycology 29 (6), pp. 767.
8. Pauw D., Verbovent N.J. & Claus C. (1983), “Large scale microalgae production for nursery
rearing of marine bivalves”, Aquacultural Engineering 2, pp. 27-47.
9. Thompson J.G.A. (1996), “Lipids and membrane function function in green algae”, Biochem.
Biophys. Acta 1302, pp. 17-45.

14