<span class='text_page_counter'>(1)</span><div class='page_container' data-page=1>

<b>TÓM TẮT </b>

Tuyển chọn vi khuẩn lactic (LAB) kháng với vi khuẩn gây bệnh hoại tử
<i>gan tụy cấp tính (Vibrio parahaemolyticus) trên tôm thẻ chân trắng (Penaeus </i>
<i>vannamei) được thực hiện tại Trường Đại học Cần Thơ từ tháng 12/2014 đến </i>
4/2017. Mục tiêu của nghiên cứu là tìm ra chủng LAB có khả năng phòng
bệnh hoại tử gan tụy cấp tính (AHPND) trên tôm thẻ chân trắng. Nghiên cứu
được thực hiện với các nội dung (1) Phân lập và sàng lọc LAB bằng các chỉ
tiêu: hình thái, sinh lý, sinh hóa; (2) Xác định tính đối kháng của LAB với vi
<i>khuẩn V. parahaemolyticus bằng phương pháp khuếch tán giếng thạch, đồng </i>
<i>thời xác định khả năng kháng V. parahaemolyticus bằng bacteriocin và khả </i>
<i>năng chịu đựng nồng độ muối của 5 chủng LAB kháng với V. </i>
<i>parahaemolyticus mạnh nhất cũng được tiến hành; (3) Thử nghiệm ảnh hưởng </i>
của LAB bổ sung vào thức ăn lên khả năng kháng AHPND; (4) Định danh
chủng LAB có khả năng kháng bệnh hoại tử gan tụy cấp tính trên tôm thẻ.

Kết quả phân lập đã phân lập được 94 chủng LAB bao gồm: 30 chủng ở
Trà Vinh, 25 chủng ở Sóc Trăng, và 39 chủng ở Bến Tre. Trong đó, số lượng
LAB phân lập trong ruột tôm 51 chủng, ruột cá rô phi 42 chủng và 2 chủng từ
bùn. Kết quả sàng lọc về các chỉ tiêu hình thái cho thấy tất cả các khuẩn lạc
phân lập được đều có màu trắng đục, tròn, lồi, có kích cỡ 1-2 mm sau 48 giờ
nuôi cấy trên môi trường MRS agar bổ sung 1,5% NaCl. Đối với chỉ tiêu sinh
lý cũng cho thấy rằng dưới kính hiển vi LAB có hình cầu và hình que, Gram
dương, khơng sinh bào tử. Kết quả xác định đặc điểm sinh hóa đã chỉ ra rằng
tất cả các chủng LAB được lựa chọn đều có khả năng làm tan CaCO3, âm tính
oxidase và catalase nhưng dương tính với O/F.

</div>
<span class='text_page_counter'>(2)</span><div class='page_container' data-page=2>

<i>lên khả năng kháng vi khuẩn V. parahaemolyticus cho thấy mật số LAB đến </i>
107 CFU/mL với các thời gian nuôi từ 24 đến 96 giờ đều không có khả năng
<i>kháng vi khuẩn V. parahaemolyticus. </i>

Kết quả thử nghiệm ảnh hưởng của việc bổ sung LAB vào thức ăn lên
tỷ lệ sống và khả năng kháng AHPND trên tôm thẻ chân trắng cho thấy ở các
<i>nghiệm thức có bổ sung LAB vào thức ăn và không cảm nhiễm V. </i>
<i>parahaemolyticus thì tỷ lệ sống của tôm rất cao và khác biệt không có ý nghĩa </i>
thống kê so với nghiệm thức đối chứng âm đồng thời tôm không có dấu hiệu
<i>AHPND. Trái lại, các nghiệm thức cảm nhiễm V. parahaemolyticus, tôm có </i>
dấu hiệu bệnh lý đặc trưng của AHPND. Tỷ lệ bệnh cao nhất là nghiệm thức
đối chứng dương (70%) và thấp nhất là ở các nghiệm thức bổ sung chủng
LAB1 và LAB5 (20%). Tỷ lệ chết cao nhất ở nghiệm thức VP+LAB3
(70,02%), kế đến là nghiệm thức đối chứng dương (54,43%) và rất thấp ở các
nghiệm thức VP+LAB1,VP+LAB2 và VP+LAB5 (20,33-26,66%). Tóm lại, tỷ
lệ sống và khả năng kháng AHPND được cải thiện đáng kể khi cho tôm ăn
thức ăn có bổ sung LAB1, LAB2, hoặc LAB5.

<b> Kết quả thử nghiệm khả năng kháng AHPND của LAB có bổ sung các </b>
thành phần acid glutamic, đường trehalose, KH2PO4, và K2HPO4 với tỷ lệ C,
N, P là 15, 1, 0,1 cho thấy hầu hết các nghiệm thức khi bổ sung các thành phần
trên, tỷ lệ sống của tôm thấp hơn so với các nghiệm thức không bổ sung trong
<i>trường hợp có và không có cảm nhiễm V. parahaemolyticus. Đối với các </i>
<i>nghiệm thức không cảm nhiễm V. parahaemolyticus thì tơm khơng có biểu </i>
hiện bệnh lý đặc trưng của AHPND, tỷ lệ sống của tôm từ 82- 88,2%. Kết quả
phân tích mô bệnh học cũng không thấy mẫu gan tụy có dấu hiện bất thường.
<i>Tuy nhiên, các nghiệm thức có cảm nhiễm V. parahaemolyticus và bở sung C, </i>
N, P thì tỷ lệ sống của tôm thấp hơn so với các nghiệm thức còn lại. Tỷ lệ sống
thấp nhất là ở nghiệm thức đối chứng dương có bổ sung và không bổ sung C,
N, P lần lượt là (47 và 52%) và tỉ lệ sống cao nhất là nghiệm thức LAB1 (76
và 78%). Kết quả mô bệnh học cho thấy ở các nghiệm thức bổ sung :C, N, P
<i>và LAB đồng thời cảm nhiễm V. parahaemolyticus thì gan tụy tôm ít bị ảnh </i>
hưởng của sự cảm nhiễm AHPND. Việc bổ sung LAB vào thức ăn đặc biệt là
chủng LAB1 có khả năng làm hạn chế AHPND trên tôm thẻ. Kết quả định

danh chủng LAB1 bằng phương pháp giải trình tự đoạn gen 16S-rRNA đã xác
<i>định chủng vi khuẩn này là Lactobacillus plantarum. </i>

</div>
<span class='text_page_counter'>(3)</span><div class='page_container' data-page=3>

<b>ABSTRACT </b>

Isolation and selection of lactic acid bacteria (LAB) that can antagonize
<i>V. parahaemolyticus causing acute hepatopancreatic necrosis disease </i>
<i>(AHPND) in white-leg shrimp (Penaeus vannamei) were conducted from </i>
December 2014 to April 2017 at Can Tho University. The objectives of this
<i>research were selecting LAB strains that can antagonize V. parahaemolyticus </i>
<i>and using these strains to prevent from AHPND in culture shrimp. The study </i>
was carried out with following four major contents: (1) Isolating and screening
LAB strains by using morphological, physiological and bio-chemical
<i>characteristics. (2) Determining their antagonism against V. parahaemolyticus </i>
of LAB strains by using agar well diffusion method. Experiment can also
<i>determine their resistance to V. parahaemolyticus by bacteriocin and the </i>
<i>ability of salt tolerance of 5 LAB strains that resist to the virulence V. </i>
<i>parahaemolyticus also conducted. (3) The effects of dietary LAB additive on </i>
resistance to AHPND. This experiment was conducted to determine the effects
of dietary LAB additive on survival and the resistance to AHPND. (4)
Identification of LAB strain that is resistant to AHPND in white-leg shrimp.

The result of isolation 94 LAB strains including: 30 strains from
TraVinh, 25 strains from Soc Trang and 39 strains from Ben Tre. The number
of LAB in gut of white-leg shrimp, gut of nile tilapia and shrimp pond
sediment were 51, 42 and 2 strains respectively. Screening results for
morphological characters showed that all the isolated colonies were milky,
round, convex, 1-2 mm in size and capable of dissolving CaCO3 after 48 hours
of culture on MRS agar supplemented with 1,5% NaCl. Physiological
properties also indicate that the LAB has a spherical (56 stains) and rod (38

strains) shaped, Gram-positive, non-spore-forming. Biochemical
characteristics have shown that all strains of LAB indicate negative reaction
for oxidase and catalase but positive for O/F.

</div>
<span class='text_page_counter'>(4)</span><div class='page_container' data-page=4>

<i>parahaemolyticus resistance ability showed that at the density of LAB from </i>
107 CFU/mL or less and culture time from 24 to 96 hours, LAB were not
<i>resistant to V. parahaemolyticus. </i>

The results of the effect of dietary LAB additive on survival rate and
<i>resistance to AHPND in Penaeus vannamei showed that the survival rate of </i>
shrimp was very high from 82,23 to 92,23% in the treatments of dietary LAB
<i>additive without challenged with V. parahaemolyticus, and there were not </i>
significantly different to the negative control treatment (87,77%). The highest
survival rate was obtained in the treatment of dietary LAB5 additive (92,23%).
In addition, shrimps did not show any symptoms of AHPND. However, in the
<i>challenged treatments with V. parahaemolyticus, shrimps showed the typical </i>
clinical signs of AHPND. The AHPND rate was highest in positive control
treatment (70,02%) and the lowest in VP+LAB1 và VP+LAB5 treatments
(20%). The mortarity rate was highest in VP+LAB3 treatment (70,02%),
followed by the positive control treatment (54,43%) and very low in
VP+LAB1,VP+LAB2 and VP+LAB5 treatments (20,33-26,66%). In
summary, the survival rate and the resistance to AHPND were significantly
improved in white-leg shrimp feeding with diets containing LAB1, LAB2, or
<i>LAB5 strains. </i>

The results of the effects of dietary LAB additive and acid glutamic,
Trehlose, KH2PO4, K2HPO4 supplementation into water with C, N, P ratio 15,
<i>1, 0,1 on survival rate and resistance to AHPND in Litopenaeus vannamei </i>
showed that almost of treatments with C, N, P supplementation indicated the
survival rate of shrimp were lower than those without C, N, P supplementation

<i>in case with or without V. parahaemolyticus challenged. In non-challenged V. </i>
<i>parahaemolyticus treatments, there were no signs of AHPND on shrimps. The </i>
survival rate of shrimp was 82-88,2% for C, N, P non-supplementaiton
treatment and 82% for C, N, P supplementation treatment. Results from
histological analyses did not show any abnormalities of hepatopancreas.
<i>However, treatments with C, N, P supplementation and V. parahaemolyticus </i>
challenged showed the survival rate of shrimp was lower than did of the other
treatments. The lowest survival rate was found in positive treatments with or
without C, N, P supplementation (47% and 52%, respectively) and the highest
survival rate was LAB1 treatments (76% and 78%). Results from histological
analyses showed that in the treatments with C, N, P supplement, dietary LAB
<i>additive with V. parahaemolyticus challenged, shrimp’s hepatopancreas were </i>
less affected by AHPND. Dietary LAB additive (especially LAB1 strain) was
able to reduce the effect of AHPND on white-leg shrimp. The result of
identification with RNA sequencing (16s-rRNA) have shown that LAB1 strain
<i>was Lactobacillus plantarum. </i>

</div>
<span class='text_page_counter'>(5)</span><div class='page_container' data-page=5>

<b>MỤC LỤC </b>

<b>LỜI CAM ĐOAN ... i </b>

<b>LỜI CẢM TẠ ... ii </b>

<b>TÓM TẮT ... iii </b>

<b>ABSTRACT ... vi </b>

<b>DANH SÁCH BẢNG ... xiii </b>

<b>DANH SÁCH HÌNH ... xiv </b>

<b>DANH MỤC TỪ VIẾT TẮT ... xvi </b>

<b>Chương 1: GIỚI THIỆU ... 1 </b>

1.1. Đặt vấn đề ... 1

1.2. Mục tiêu tổng quát... 2

1.3. Mục tiêu cụ thể ... 2

1.4. Nội dung nghiên cứu ... 2

1.5. Ý nghĩa nghiên cứu ... 3

1.6. Điểm mới của luận án ... 3

<b>Chương 2: TỔNG QUAN TÀI LIỆU ... 4 </b>

2.1. Sơ lược về tôm thẻ chân trắng ... 4

2.1.1. Hiện trạng nghề nuôi tôm thẻ chân trắng trên thế giới ... 5

2.1.2. Hiện trạng nghề nuôi tôm thẻ chân trắng ở Việt Nam ... 7

2.2. Sơ lược về tình hình dịch bệnh hoại tử gan tụy cấp tính trong và ngồi
nước ... 8

2.2.1. Tình hình bệnh hoại tử gan tụy cấp tính trên thế giới ... 9

2.2.2. Tình hình nghiên cứu bệnh hoại tử gan tụy cấp ở Việt Nam ... 10

2.3. Tổng quan về vi khuẩn gây bệnh hoại tử gan tụy cấp tính và các nghiên
<i>cứu về độc lực của V. parahaemolyticus ... 11 </i>

<i>2.3.1. Các thông tin liên quan đến đặc điểm của chủng vi khuẩn V. </i>
<i>parahaemolyticus gây bệnh trên tôm ... 11 </i>

<i>2.3.2. Gen độc lực của chủng vi khuẩn V. parahaemolyticus gây bệnh trên </i>
tôm ... 13

2.3.3. Đặc điểm dịch tễ học ... 15

<i>2.3.4. Các nghiên cứu về độc lực của V. parahaemolyticus ... 16 </i>

</div>
<span class='text_page_counter'>(6)</span><div class='page_container' data-page=6>

2.4. Đặc điểm sinh học của vi khuẩn lactic ... 20

2.4.1. Sơ lược về vi khuẩn lactic ... 20

2.4.2. Đặc tính chung của vi khuẩn lactic ... 22

2.4.3. Ảnh hưởng của yếu tố môi trường lên sự phát triển của LAB ... 22

2.4.4. Khả năng kháng với kháng sinh ... 24

2.4.5. Cơ chế kháng khuẩn của vi khuẩn lactic ... 24

2.4.6. Các nghiên cứu về khả năng kháng khuẩn của vi khuẩn lactic trong
nuôi trồng thủy sản ... 27

<b>Chương 3: PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU ... 38 </b>

3.1. Thời gian và địa điểm nghiên cứu ... 38

3.2. Vật liệu nghiên cứu ... 38

3.2.1. Dụng cụ và trang thiết bị phục vụ nghiên cứu ... 38

3.2.2. Hóa chất, môi trường nuôi cấy vi khuẩn ... 38

3.3. Phương pháp nghiên cứu ... 39

3.3.1. Phân lập LAB từ nhiều nguồn khác nhau... 39

3.3.2. Xác định tính đối kháng của chủng vi khuẩn phân lập được với vi
<i>khuẩn V. parahaemolyticus trong điều kiện in vitro ... 41 </i>

3.3.3. Thử nghiệm khả năng kháng bệnh hoại tử gan tụy cấp khi bổ sung
các chủng LAB vào thức ăn ... 43

3.3.4. Định danh chủng LAB có khả năng kháng bệnh hoại tử gan tụy cấp
tính ... 49

3.4. Phương pháp xử lý số liệu ... 50

<b>Chương 4: KẾT QUẢ THẢO LUẬN ... 51 </b>

4.1. Phân lập các chủng LAB và xác định các chỉ tiêu hình thái sinh lý sinh
hóa. ... 51

4.1.1. Phân lập LAB ... 51

4.1.2. Xác định các chỉ tiêu hình thái, sinh lý và sinh hóa của LAB ... 52

<i>4.2. Kết quả xác định tính đối kháng của vi khuẩn lactic với vi khuẩn V. </i>
<i>parahaemolyticus trong điều kiện in vitro ... 53 </i>

</div>
<span class='text_page_counter'>(7)</span><div class='page_container' data-page=7>

4.2.3. Thử nghiệm các nồng độ muối khác nhau ảnh hưởng lên mật số của

vi khuẩn lactic... 59

4.3. Thử nghiệm khả năng kháng bệnh hoại tử gan tụy cấp của các chủng
LAB bằng phương pháp cho ăn. ... 61

4.3.1. Biến động các yếu tố môi trường trong các lô thí nghiệm ... 61

4.3.2. Kết quả kiểm tra chất lượng tôm thí nghiệm ... 62

4.3.3. Ảnh hưởng của việc bổ sung LAB vào thức ăn lên tỷ lệ sống và khả
<i>năng kháng bệnh hoại tử gan tụy cấp tính trên tôm thẻ chân trắng (Penaeus </i>
<i>vannamei). ... 64 </i>

4.4. Thử nghiệm khả năng kháng bệnh hoại tử gan tụy cấp tính của chủng vi
khuẩn lactic có bổ sung các thành phần C,N,P (acid glutamic, KH2PO4,
K2HPO4, và đường trehalose) vào môi trường nước thí nghiệm. ... 74

<i>4.4.1. Mật số vi khuẩn Vibrio trong nước ... 74 </i>

<i>4.4.2. Mật số vi khuẩn Vibrio tổng trong ruột tôm thí nghiệm ... 76 </i>

<i>4.4.3. Mật số Vibrio có khuẩn lạc màu xanh trong ruột tôm thí nghiệm .... 78 </i>

4.4.4. Mật số vi khuẩn lactic trong ruột tôm thí nghiệm ... 80

4.4.5. Dấu hiệu bệnh lý và tỷ lệ sống ... 82

4.4.6. Kết quả phân tích mô bệnh học ... 86

<i>4.5. Kết quả định danh LAB có khả năng kháng mạnh nhất với vi khuẩn V. </i>
<i>parahaemolyticus ... 87 </i>

4.5.1. Kết quả định danh LAB1 bằng phương pháp giải trình tự gen 16s ... 87

4.5.2. Kết quả định danh LAB2 và LAB5 bằng phương pháp giải trình tự
gen 16s ... 89

4.5.3. Kết quả định danh LAB3 bằng phương pháp giải trình tự gen 16s ... 90

4.5.4. Kết quả định danh LAB4 bằng phương pháp giải trình tự gen 16s ... 91

<b>Chương 5 KẾT LUẬN VÀ ĐỀ XUẤT ... 93 </b>

5.1. Kết luận ... 93

5.2. Đề xuất ... 93

<b>DANH MỤC BÀI BÁO ĐÃ CÔNG BỐ ... 94 </b>

</div>
<span class='text_page_counter'>(8)</span><div class='page_container' data-page=8>

<b>DANH SÁCH BẢNG </b>

Bảng 2.1: Tỷ lệ các thành phần nguyên tố và protein trong vi khuẩn ... 12

Bảng 2.2: Các sản phẩm biến dưỡng và kiểu hoạt động của vi khuẩn lactic
... 25

Bảng 2.3: Sự phân bố số lượng mẫu thu thí nghiệm ... 39

Bảng 2.4: Các chỉ tiêu về hình thái sinh lý, sinh hóa ... 41

Bảng 3.3: Thí nghiệm bổ sung LAB vào thức ăn lên tỷ lệ sống và khả năng
kháng bệnh hoại tử gan tụy cấp tính trên tôm thẻ chân trắng ... 46

Bảng 3.4: Các nghiệm thức thử nghiệm xác định hiệu quả phịng AHPND
trên tơm thẻ chân trắng bằng LAB trong điều kiện có bổ sung glutamic
acid, đường trehalose, KH2PO4, và K2HPO4 ... 49

Bảng 4.1: Các chỉ tiêu hình thái, sinh lý và sinh hóa của vi khuẩn lactic ... 52

Bảng 4.3: Biến động các yếu tố thủy lý hóa trong các lô thí nghiệm ... 61

<i>Bảng 4.4: Biến động của mật số Vibrio trong nước thí nghiệm ... 65 </i>

<i>Bảng 4.5: Mật số vi khuẩn Vibrio tổng trong ruột tôm thẻ ... 67 </i>

Bảng 4.6: Mật số LAB trong ruột tôm thẻ thí nghiệm ... 70

<i>Bảng 4.7: Biến động mật số Vibrio trong nước thí nghiệm ... 75 </i>

<i>Bảng 4.8: Biến động mật độ vi khuẩn Vibrio tổng trong ruột tôm thí nghiệm</i>
... 77

<i>Bảng 4.9: Biến động mật độ vi khuẩn Vibrio có khuẩn lạc màu xanh trong </i>
ruột tôm thí nghiệm ... 78

</div>
<span class='text_page_counter'>(9)</span><div class='page_container' data-page=9>

<b>DANH SÁCH HÌNH </b>

Hình 2.1: Sản lượng tơm ni thế giới ... 6

Hình 2.2: Sản lượng tơm thẻ ni ở chấu Á giai đoạn 2011-2018 ... 7

Hình 2.3: Diễn biến diện tích nuôi tôm thẻ chân trắng trong giai đoạn
2008-2014 ... 8

Hình 2.4: Biểu hiện bệnh hoại tử gan tụy cấp tính trên tơm ... 14

Hình 2.5: Mơ bệnh học tôm hoại tử gan tụy AHPND ... 15

Hình 2.6: Cây phát sinh lồi của vi khuẩn lactic ... 21

Hình 4.1: Các chủng LAB được phân lập từ ruột tơm ... 51

Hình 4.2: Các chủng LAB được phân lập từ ruột cá rô phi ... 51

Hình 4.3: Các chủng LAB được phân lập từ bùn ... 52

<i>Hình 4.4: Khả năng kháng khuẩn của LAB với V. parahaemolyticus tại Trà </i>
Vinh ... 54

<i>Hình 4.5: Khả năng kháng V. parahaemolyticus của chủng vi khuẩn lactic </i>
<i>phân lập được tại Trà Vinh ... 55 </i>

<i>Hình 4.6: Khả năng kháng khuẩn của LAB với V. parahaemolyticus tại Sóc </i>
Trăng ... 55

<i>Hình 4.7: Khả năng kháng khuẩn của vi khuẩn lactic với vi khuẩn V. </i>
<i>parahaemolyticus ở tỉnh Sóc Trăng ... 56 </i>

<i>Hình 4.8: Khả năng kháng khuẩn của LAB với V. parahaemolyticus tại Bến </i>
Tre ... 56

<i>Hình 4.9: Khả năng kháng khuẩn của vi khuẩn lactic với vi khuẩn V. </i>
<i>parahaemolyticus ở tỉnh Bến Tre ... 57 </i>

Hình 4.10: Kết quả xác định khả năng tạo bacteriocin và tính kháng khuẩn
<i>của LAB với V. parahaemolyticus ... 59 </i>

Hình 4.11: Biến động của mật số LAB ở các nồng độ muối khác nhau với
thời gian ni 48 giờ ... 60

</div>
<span class='text_page_counter'>(10)</span><div class='page_container' data-page=10>

Hình 4.13: Kết quả kiểm tra WSSV trên tôm thẻ thí nghiệm ... 63

Hình 4.14: Kết quả kiểm tra AHPND trên tơm thẻ thí nghiệm ... 64

Hình 4.15: Tỷ lệ chết của tôm qua từng mốc thời gian thí nghiệm ... 71

Hình 4.16: Tỷ lệ chết của tơm thẻ được cho ăn thức ăn có bổ sung LAB .. 71

Hình 4.17: Mơ bệnh học tơm thí nghiệm ... 74

Hình 4.18: Hình tơm và gan tụy tơm ... 83

Hình 4.19: Tỷ lệ chết của tơm qua từng giai đoạn thí nghiệm ... 84

Hình 4.20: Tỷ lệ sống của tôm thẻ chân trắng sau 14 ngày cảm nhiễm ... 85

Hình 4.21: Kết quả mơ bệnh học gan tụy tơm ... 87

<i>Hình 4.22: Kết quả tương đồng của chủng LAB1 với Lactobacillus </i>
<i>plantarum . ... 88 </i>

<i>Hình 4.23: Kết quả tương đồng của chủng LAB2 với Pediocococcus </i>
<i>pentosaceus . ... 89 </i>

<i>Hình 4.24: Kết quả tương đồng của chủng LAB5 với Pediocococcus </i>
<i>pentosaceus . ... 90 </i>

<i>Hình 4.25: Kết quả tương đồng của chủng LAB3 với Lactococus garvieae .</i>
... 91

</div>
<span class='text_page_counter'>(11)</span><div class='page_container' data-page=11>

<b>DANH MỤC TỪ VIẾT TẮT </b>

AHPND: Acute Hepatapancreatic Necrosis Disease (Bệnh hoại tử gan tụy cấp
tính)

AHPNS: Acute Hepatapancreatic Necrosis Syndrome (Hội chứng hoại tử
gan tụy cấp)

BLAST: Basic Local Alignment Search Tool
BTS: Bộ Thủy sản

<b>CFU: </b> Colony Forming Unit (Đơn vị hình thành khuẩn lạc)
<b>ĐBSCL: Đồng bằng sông Cửu Long </b>

DNA: Deoxyribo Nucleic Acid

EMS: Early Mortality Syndrome (Hội chứng tôm chết sớm)

<b>FAO: </b> Food and Agriculture Organization (Tổ chức Lương thực và Nông
nghiệp Liên Hợp Quốc)

GAV: Gill Associated Virus (Virus gây bệnh trên mang)

GRAS: Generally Recognized as Safe (Chứng nhận an toàn thực phẩm)
HPV: Hepatopancreatic Parvovirus (Virus gây bệnh Parvovirus)

IHHNV: Infectious Hypothermal And Hematopoietic Necrosis Virus ( Virus
gây bệnh hoại tử dưới vỏ và cơ quan tạo máu)

LAB: Lactic Acid Bacteria (Vi khuẩn lactic)

MBV: Monodon Baculo Virus (Virus gây bệnh cịi trên tơm)
MRSA: Man Rogosa Sharpe Agar (Môi trường cấy vi khuẩn lactic)
MRSB: Man Rogosa Sharpe Broth (Môi trường nuôi vi khuẩn lactic)
<b>NA: </b> Nutrient Agar (Môi trường nuôi cấy vi khuẩn tổng)

NCBI: National Center for Biotechnology Information (Trung tâm thông tin
Công nghệ Sinh học Quốc gia)

NT: Nghiệm thức

NTTS: Nuôi trồng thủy sản

</div>
<span class='text_page_counter'>(12)</span><div class='page_container' data-page=12>

<b>TÀI LIỆU THAM KHẢO </b>

Abee T., G. Beldman, B. van den Broek, M.J.R. Nout, F.M. Rombouts, S.
Schoustra, F. Voragen chứng minh J. Wouters, 1999. Food Fermentation.
Marcel Dekker, Inc., New York. Part I.

<i>Al-Ani, F.Y., Z.M. Al-Khafaji, 1980. Minimal growth requirements for Vibrio </i>
<i>parahaemolyticus strain 12. Iraqi J. Sci. Vol. 21, No.1,1-13. </i>

Alessandro Del’Duca, Dioneia Evangelista Cesar and Paulo Cesar Abreu, 2013.
Bacterial community of pond’s water, sediment and in the guts of tilapia
<i>(Oreochromis niloticus) juveniles characterized by fluorescent in situ </i>
hybridization technique. Aquaculture Research, pp 1–9.

Aly S.M., Y. Abdel-Galil Ahmed , A. Abdel-Aziz Ghareeb, M. F.Mohamed,
<i>2008. Studies on Bacillus subtilis and Lactobacillus acidophilus, as </i>
<i>potential probiotics, on the immune response and resistance of Tilapia </i>
<i>nilotica (Oreochromis niloticus) to challenge infections. Fish Shellfish </i>
Immunol. 2008 Jul; 25(1-2):128-36

Anderson J.L., D. Valderrama and D. Jory, 2016. Shrimp production review.
The Global Aquaculture Alliance's annual GOAL conference, September
19-22/9/2016 Guangzhou, China
accessed on 28/8/2017.
Andlid T., R. Vazque-Juarez, L. Gustafsson, 1995. Yeast colonizing the

<i>intestine of rainbow trout (Salmo gairdneri) and turbot (Scophthalmus </i>
<i>maximus). Microb. Ecol. 30, 321-334. </i>

Arnikunnas J., 2006. Metabolic engineering of lactic acid bacteria and
characterization of novel enzymes for the production of industrially
important compounds. Department of Basic Veterinary Sciences, Division
of Microbiology and Epidemiology, University of Helsinki. 67 p.

Ashenafi M, Busse M.,1991. Growth potential of Salmonella infantis and
Escherichia coli in fermenting tempeh made from horsebean, pea and
<i>chickpea and their inhibition by Lactobacillus plantarum. J Sci Food Agric </i>
1991; 55:607-615.

Aubin J., F. J. Gatesoupe, L. Labbé, L. Lebrun, 2005. Trial of probiotics to
prevent the vertebral column compression syndrome in rainbow trout
<i>(Oncorhynchus mykiss Walbaum). Aquac Res 2005;36:758-767. </i>

</div>
<span class='text_page_counter'>(13)</span><div class='page_container' data-page=13>

Axelsson L. T., 1993. Lactic acid bacteria: Classification and Physiology:
Lactic Acid Bacteria. S. Salminen and A. V. Wright (ed.). Marcel Dekker,
INC., New York: 1-52.

Balcázar J. L, IgnaciodeBlas, ImanolRuiz-Zarzuela, David Cunningham,
DanielVendrell, José LuisMúzquiz, 2006. The role of probiotic in
aquaculture. Veterinary Microbiology Volume 114 (2006), Issues 3-4,
pages 173–186.

Balcázar J. L., I. de Blas, I. Ruiz-Zarzuela,D. Vendrell and J. L. Muzquiz, 2004.
Probiotics: a tool for the future of fish and shellfish health management. J.
Aquacult. Trop. 19, 239–242.

Bartie, K., D. T. H. Oanh, G. Huys, C. Dickson, M. Cnockaert, J. Swings, N. T.
Phương and A. Teale, 2006. Ứng dụng REP-PCR và PFGE để định týp vi

khuẩn kháng chloramphenicol phân lập tại các trại nuôi thủy sản ở đồng
bằng sông Cửu Long. Tạp chí cơng nghệ sinh học. 4 (1): 31-40.

Bernet-Camard M. F., V. Lievin, D. Brassart, J. R. Neeser, A. L. Servin and S.
<i>Hudault, 1997. The human Lactobacillus acidophilus strain LA1 secretes a </i>
<i>nonbacteriocin antibacterial substance(s) active in vitro and in vivo. Applied </i>
and Environmental Microbiology. 63: 2747-2753.

Bhunia, A.K., Johnson, M.C. and Ray, B. (1988) Purification, characterization
<i>and antimicrobial spectrum of a bacteriocin produced by Pediococcus </i>
<i><b>acidilactici. J Appl Becteriol 65, 261–268. </b></i>

Bixquert J. M.,2009. Treatment of irritable bowel syndrome with probiotics: an
etiopathogenic approach at last. Rev Esp Enferm Dig. 101(8): 553-564.
Bogut I., Z. Milakovic, S. Brkic, D. Novoselic, Z. Bukvic, 2000. Effects of

<i>Enterococcus faecium on the growth rate and content of intestinal </i>
<i>microflora in sheat fish (Silurus glanis). Vet. Med. CZECH 45, 2000(4) </i>
:107-109.

Bonadè A., F. Murelli, M. Vescovo and G. Scolari, 2001. Partial
<i>characterization of a bacteriocin produced by Lactobacillus helveticus. </i>
Letters in Applied Microbiology, 33, pp. 153 – 158.

Boyd C.E. and B. W. Green, 2002. Coastal water quality monitoring in shrimp
areas: An Example from Honduras. Report of the World Bank, NACA,
WWF and FAO consortium progam on Shrimp farmming and the
Enviroment. Work progress for Public discussion. 29 pages.

</div>
<span class='text_page_counter'>(14)</span><div class='page_container' data-page=14>

Introduction and movement of two penaeid shrimp species in Asia and the

Pacific. FAO Fisheries Technical Paper 476. 78 pp.

Browdy C. L., A. J. Ray, J. W. Leffler and Y. Avnimelech, 2012.
<i>Biofloc-based Aquaculture systems. In: J. H. Tidwell (Editor). Aquaculture </i>
Production Systems. Wiley-Blackwell. Chapter: 12, pp.278-307

<i>Brunt J., B. Austin, 2005. Use of a probiotic to control Lactococcosis and </i>
<i>Streptococcosis in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). J Fish </i>
Dis 2005;28:693-701.

Butprom S., P. Phumkhachorn, and P. Rattanachaikunsopon, 2013. Effect
<i>of Lactobacillus plantarum C014 on innate immune response and disease </i>
<i>resistance against Aeromonas hydrophila in hybrid catfish.The Scientific </i>
World Journal Volume 2013, 6 pages.

Caplicec E., G. F. Fitzgerald, 1999. Food fermentations: role of microorganisms
in food production and preservation. International Journal of Food
Microbiology 50, 131–149.

Carnevali O., M. C. Zamponi, R. Sulpizio, A. Rollo, M. Nardi, C. Orpianesi, S.
Silvi, M. Caggiano, A. M. Polzonetti and A. Cresci, 2004. Administration
of probiotic strain to improve sea bream wellness during development.
Aquaculture International, 12: 377 – 386.

Carr F.J., D. Hill, N. Maida, 2002. The lactic acid bacteria: A literature survey.
Crit. Rev. Microbiol. 28, 281-370.

Castex M., L. Chim, D. Pham, P. Lemaire, N. Wabete, Nicolas Jean-Louis, P.
<i>Schmidely, C. Mariojouls, 2008. Probiotic P. acidilactici application in </i>
<i>shrimp Litopenaeus stylirostris culture subject to vibriosis in New </i>

Caledonia. Aquaculture (0044-8486) (Elsevier), 2008-03 , Vol. 275 , N.
1-4 , P. 182-193.

<i>Cebeci A, Gurakan C., 2003. Properties of protential probiotic Lactobacillus </i>
<i>plantarum strains. Food Microbiol; 20:511-518. </i>

Chae-Woo Ma, Yun-Seok Cho, Kye-Heon Oh, 2009. Removal of pathogenic
<i>bacteria and nitrogens by Lactobacillus spp. JK-8 and JK-11. Aquaculture </i>
287 (266–270).

<i>Chamberlain G.W., 2001. Managing zero water–exchange ponds. In: </i>
Rosenberry, B.(Eds.). World shrimp farming 2001. Published Annually
Shrimps News International 14, 11-18.

</div>
<span class='text_page_counter'>(15)</span><div class='page_container' data-page=15>

areas. Aquaculture Asia, 8 (3): 53-56.

Chanratchakool P., J.F. Turnbull, S.J. Funge-Smith, I.H. Macrae và C.
Limsuwan, 1995. Quản lý sức khỏe tôm trong ao nuôi. Tái bản lần thứ 4.
Người dịch: Nguyễn Anh Tuấn, Nguyễn Thanh Phương, Đặng Thị Hoàng
Oanh, Trần Ngọc Hải. Danida-Bộ Thủy sản 2003. 153 p.

<i>Chen J. C and T. S. Chin, 1998. Accute oxicty of nitrite to tiger prawn, Penaeus </i>
<i>monodon, larvae. Aquaculture 69, pp. 253-262. </i>

Chythanya R., I. Karunasagar, I. Karunasagar, 2002. Inhibition of shrimp
<i>pathogenic vibrios by a marine Pseudomonas I-2 strain. Aquaculture 208, </i>
1-10.

Cladera-Olivera, F., Caron, G.R., Brandelli, A., 2004. Bacteriocin-like
substance production by Bacillus licheniformis strain P40. Litters in

Applied Microbiology 38, 251-256.

Conway P.L., 1996. Development of intestinal microbiota. In: Mackie, R.I.,
White, B.A., Isaacson, R.E. (Eds.), Gastrointestinal Microbiology.
Chapman and Hall, New York, pp. 3– 38.

CSIRO, 2008. Phương pháp PCR phát hiện ADN của các giáp xác mười chân
theo OIE, sử dụng các mồi của CSIRO. Hội thảo về PCR phát hiện WSSV,
Cần Thơ, trang 18.

Cục Thú y, 2014. Tổng kết Nuôi tôm nước lợ năm 2014 và xây dựng kế hoạch
năm 2015. Bến Tre, ngày 4/11/2014.

Cục Thú Y, 2016. Báo cáo chuyên đề Công tác Thú y năm 2016 và kế hoạch

công tác Thú y năm

2017 (truy
cập 19/9/2017).

Daeschel M.A., 1989. Antimicrobial substances from lactic acid bacteria for use
as food preservatives. Food Technol., 43: 164-167.

Đặng Thị Hoàng Oanh và Nguyễn Thanh Phương, 2012. Các bệnh nguy hiểm
trên tơm ni ở Đồng Bằng Sơng Cửu Long. Tạp chí Khoa học 2012:22c
106-118.

Đặng Thị Lụa, Lại Thị Ngọc Hà, và Nguyễn Thanh Hải, 2015. tác dụng diệt
<i>khuẩn của dịch chiết lá sim và hạt sim (Rhodomyrtus tomentosa) đối với </i>
vi khuẩn gây bệnh hoại tử gan tụy cấp trên tơm nước lợ. Tạp chí Khoa học

và Phát triển số 7: 1101-1108.

</div>
<span class='text_page_counter'>(16)</span><div class='page_container' data-page=16>

<i>parahaemolyticus gây bệnh hoại tử gan tụy cấp (AHPND) trên tôm nuôi. </i>
Tạp chí Khoa học Nơng nghiệp Việt Nam tập 14, số 5: 690-698.

Daniels, N. A., L. MacKinnon, R. Bishop, S. Altekruse, B. Ray, R. M.
<i>Hammond,S. Thompson, S. Wilson, N. H. Bean, 2000. Vibrio </i>
<i>parahaemolyticus infections in the United States, 1973–1998. J. Infect Dis </i>
181, 1661–1666.

De la Peña LD, Cabillon NA, Catedral DD, Amar EC, Usero RC, Monotilla
WD, Calpe AT, Fernandez DD, Saloma CP, 2015. Acute hepatopancreatic
<i>necrosis disease (AHPND) outbreaks in Penaeus vannamei and P. monodon </i>
cultured in the Philippines. 116(3):251-254.

De Paola A., L. H. Hopkins, J. T. Peeler, B. Wentz, R. M. McPhearson, 1990.
<i>Incidence of Vibrio parahaemolyticusin U.S. coastal waters and </i>
oysters. Applied Environment Microbiology. 56: 2299–2302.

De Vuyst L., B. Degee, 1999. Heteropolysaccharides from lactic acid bacteria.
FEMS Microbiology. Review. 23: 153-177.

Dhanasekaran D, Subhasish Saha, N. Thajuddin, M. Rajalakshmi and A.
<i>Panneerselvam, 2010. Probiotic effect of Lactobacillus isolates against </i>
bcterial pathogens in fresh water fish. Journal of Coastal Development,
Volume 13, Number 2, February 2010: 103-112.

Direkbusaracom S., M. Yoshimizu, Y. Ezura, L. Ruangpan, Y. Danayadol,
<i>1998. Vibrio spp. The dominant flora in shrimp hatchery against some fish </i>
pathogenic viruses. J. Mar. Biotechnol. 6, 266-267.

Dubernet, S., N. Desmasures, M. Guéguen. 2002. A PCR-based method for
<i>identification of Lactobacilli at the genus level. FEMS Microbiology </i>
Letters, 214: pp. 271 – 275.

Eduardor M.L. and C.V. Mohan, 2012. Early Mortality Syndrome (EMS)/Acute
Hepatopancreatic Necrosis Syndrome (AHPNS): An emerging threat in the
Asian shrimp industry. Asia Regional Aquatic Animal Health Programme.

(truy cập ngày 19/9/2017).

Etchells, J.L., Costilow, R.N., Anderson, T.E. and Bell, T.A. (1964) Pure culture
<b>fermentations of brined cucumbers. Appl Environ Microbiol 12, 523–535. </b>

</div>
<span class='text_page_counter'>(17)</span><div class='page_container' data-page=17>

40 pp.

<i>FAO, 2006. Cultured Aquatic Species Information Programme. Penaeus </i>
<i>vannamei. </i> <i>species/Penaeus </i>
<i>vannamei/en (truy cập ngày 19/9/2017). </i>

FAO, 2013. Report of the FAO/MARD Technical Workshop on Early Mortality
Syndrome (EMS) or Acute Hepatopancreatic Necrosis Disease (AHPND)
of culturre shrimp (under TCP/VIE/3304). Hanoi, Viet Nam, on 25-27 June
2013. FAO Fisheries and Aquaculture Report No. 1053. Rome. 54pp.
FEHD, 2005. Vibro species in seafood. Risk Assessement Study, Report No.

20. Food and Environmental Hygiene Department, The Government of the
Hong Kong Special Administrative Region. 25 pages.

Flegel T.W., 2012. Historic emergence, impact and current status of shrimp

pathogens in Asia. Journal of Invertebrate Pathology 110:166-173.

Fleming, H. and McFeeters, R.F. (1981) Use of microbial cultures: vegetable
<i><b>products. Food Technol 35, 84–87. </b></i>

Fooks L.J., R. Fuller, G.R. Gibson, 1999. Prebiotics, probiotics and human gut
microbiol. 22, 133-144.

Frank J. C and Nino M (2002), “The Lactic Acid Bacteria”. Microbiology, vol
28, pp. 281-370.

Fuller R., 1989. Probiotics in man and animals. J Appl Bacteriol, 66, pp.
65–78.

<i>Fuller R., 1992. History and development of probiotics. In: Fuller, R. (Ed.), </i>
Probiotics: The Scientific Basis. Chapman and Hall, London, pp. 1–8.
Fuller R., 1998. Probiotics in man and animals. J Appl Bacteriol 1989; 66: 365–

78.

<i>Galindo A. B., 2004. Lactobacillus plantarum 44A as a live feed supplement </i>
for freshwater fish. Ph.D Thesis, 131p.

Gänzle M. G., A. Höltzel, J. Walter, G. Jung,W. P. Hammes, 2000.
<i>Characterization of reutericyclin produced by Lactobacillus reuteri </i>
LTH2584. Appl Environt Microbiol 66:4325–4333.

</div>
<span class='text_page_counter'>(18)</span><div class='page_container' data-page=18>

the Special Session on Shirmp Farming, Aquaculture'95. World
Aquaculture Society, Baton Rouge, Louisiana, USA, pp. 53-59.

Gatesoupe, 1994. The effect of three strains of lactic bacteria of lactic bacteria
<i>on the production rate of rotifers, Brachionus plicatilis, and their dietary </i>
<i>value for larval turbot, Scophthalmus maximus. Aquaculture 96, 335-342. </i>
Gerald F. F., 1999. Food fermentations: role of microorganisms in food

production and preservation. Department of Microbiology, University
College, Cork, Ireland. Department of Food Science and Technology,
University College, Cork, Ireland. International Journal of Food
Microbiology 50 (1999) pp. 131-149.

Gildberg A., H. Mikkelsen, 1998. Effects of supplementing the feed to Atlantic
<i>cod (Gadus morhua) fry with lactic acid bacteria and immuno-stimulating </i>
<i>peptides during a challenge trial with Vibrio anguillarum. Journal of Applied </i>
Microbiology. 167.103–113.

Gildberg A., H. Mikkelsen, E. Sandaker and E. Ringo, 1997. Probiotic effect
of lactic acid bacteria in the feed on growth and survival of fry of Atlantic
<i>cod (Gadus morhua). Hydrobiologia 352: pp. 279 – 285. </i>

Girones R., J. T. Jofre, A. Bosch, 1989. Isolation of marine bacteria with
antiviral properties. Can. J. Microbiol. 35, 1015–1021.

<i>Gobbetti M., A. Corsetti, 1997. Lactobacillus Sanfrancisco a key sourdough </i>
lactic acid bacterium: a review. Food Microbiol. 14, 175-187.

Gomez-Gil B., A. Roque, 1998. Selection of probiotic bacteria for use in
<i>aquaculture. In Flegel TW (ed) Advances in shrimp biotechnology. </i>
National Center for Genetic Engineering and Biotechnology, Bangkok.
Songklanakarin J. Sci. Technol.30 (Suppl.1), 141-148.

Gomez-Gil B., A. Roque, J.F. Turnbull, 2000. The use and selection of
probiotic bacteria for use in the culture of larval aquatic organisms.
Aquaculture 191, 259–270.

Gonzalez, C.F. and Kunka, B.S. (1987) Plasmid‐associated bacteriocin
<i>production and sucrose fermentation in Pediococcus acidilactici. Appl </i>
<b>Environ Microbiol 53, 2534–2538. </b>

<i>Gottschalk G., 1988. Chapter 8 Bacterial fermentations. In: Bacterial </i>
Metabolism, 2nd ed. Springer-Verlag, New York, USA. pp 223-224.
Grath M. S. and V. D. Sinderen, 2007. Bacteriophage: Genetics and Molecular

</div>
<span class='text_page_counter'>(19)</span><div class='page_container' data-page=19>

Gullian M., J. Rodríguez, 2002.Immunostimulant qualities of probiotic
bacteria. Global Aquacult. Advocate 5, 52–54.

Hadi Zokaei Far, Che Roos B. Saad, Hassan Mohd Daud, Sharr Azni Harmin,
<i>ShahramShakibazadeh, 2009. Effect of Bacillus subtilis on the growth and </i>
<i>survival rate of shrimp (Litopenaeus vannamei). African Journal of </i>
Biotechnology Vol. 8 (14), pp. 3369-3376.

Harris, L.J., H.P. Fleming, T.R. Klaenhammer, 1992. Characterization of two
<i>nisinprodicing Lactococcus lactis subsp. lastis strains isolated from a </i>
commercial sauerkraut fermentation. Appl. Environment. Microbiol. 58,
1477-1483.

Helander I.M., H. L. Alakomı, K. Latva-Kala, T. Mattıla-Sandholm, I. Pol, E.
J. Smid, L. G. M. Gorrıs, A. Von Wrıght, 1997. Characterization of the
action of selected essential oil components on gram-negative bacteria.
Journal of Agricultural and Food Chemistry, 46: 3590–3595.

Hồ Lê Quỳnh Châu, Hồ Trung Thông và Nguyễn Thị Khánh Quỳnh, 2010.
<i>Đánh giá khả năng bám dính và kháng khuẩn ở mức độ in vitro của một số </i>
chủng vi sinh vật có tiềm năng sử dụng làm probiotics. Tạp chí Khoa học,
Đại học Huế, 57: tr. 5 – 13.

Holland K. T., J. S. Knapp, J. G. Shoesmith, 1987. Anaerobic bacteria. Blackie
USA: Chapman & Hall. New York. 206 pages.

Holmstrom K., S. Graslund, A. Wahlstrom, S. Poungshompoo, B. Bengtsson,
N. Kautsky, 2003. Antibiotic use in shrimp farming and implications for
environmental impacts and human health. Int. J. Food Sci. Tech, 38:
255-266.

Holzapfel W.H., P.Haberer, R. Geisen, J. Bjorkroth, U. Schillinger, 2001.
Taxonomy and important features of probiotic microorganisms in food
nutrition. Am. J. Clin. Nutr. 73, 365S-373S.

Holzapfel, W.H., Geisen, R., and Schillinger, U., 1995. Biological preservation
of foods with reference to protective cultures, bacteriocins and food grade
enzymes. Int J Food Microbiol 24: 343-362. Bacteriocins and Their
Applications in Food Preservation (PDF Download Available). Available
from:

/>Their_Applications_in_Food_Preservation [accessed Dec 13 2017].

</div>
<span class='text_page_counter'>(20)</span><div class='page_container' data-page=20>

Huang, J., Lacroix, C., Daba, H. and Simard, R.E. (1996) Pediocin 5 production
and plasmid stability during continuous free and immobilized cell cultures
<i><b>of Pediococcus acidilactici UL5. J Appl Bacteriol 80, 635–644. </b></i>

Huong Nguyen Thi Thanh, Hien L. Thuy, Wenresti G. Gallardo and Hai N.
<i>Thanh, 2014. Bacterial population in intensive tilapia (Oreochromis </i>
<i>niloticus) culture pond sediment in Hai Duong province, Vietnam. </i>
International Journal of Fisheries and Aquaculture. Volume 6, pp.
133-139.

Huỳnh Ngọc Trưởng, Trần Thị Ngọc Thanh, Nguyễn Tiến Dũng, 2015. Tình
<i>hình nhiễm và tỉ lệ kháng thuốc của Vibrio spp. phân lập từ thủy sản và </i>
nước nuôi tại Tiền Giang. Tạp chí khoa học Đại học Sư phạm Thành Phố
Hồ Chí Minh. 2(67): pp 157-167.

Irianto A., B. Austin, 2002. Use of probiotics to control furunculosis in rainbow
<i>trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). J. Fish Dis. 25, 333–342. </i>

ITIS, 2016. Integrated Taxonomy Information system:

<i>Litopenaeus </i> <i>vannamei </i> (Boone, 1931).

/>arch_value=551682#null (truy cập ngày 19/9/2017)

Jay J. M., 2000. Modern Food Microbiology, 6th edition. An Aspen
Publication, Aspen Publishers, Inc. Gaithersburg, Maryland. 637p.

<i>Jayasree L., P. Janakiram and R. Madhavi, 2006. Characterization of Vibrio </i>
<i>spp. Associated with Diseased Shrimp from Culture Ponds of Andhra </i>
Pradesh (India). Journal of the World Aquaculture Society, Volume 37
Issue 4. 523 pp.

Joshi, J., Srisala, J., Truong, V.H., Chen, I.T., Nuangsaeng, B., Suthienkul, O.,
<i>Thitamadee, S. (2014). Variation of Vibrio parahaemolyticus isolates from </i>

a single Thai shrimp farm experiencing an outbreak of AHPND disease.
Aquaculture 428: 297-302.

Kakinuma Y., 1998. Inorganic cation transpost and energy transduction in
Enterococcus hirae and other streptococci. Microbiology and Molecular
Biology, vol 62, pp. 1021 -1045.

Kamei Y., M. Yoshimizu, Y. Ezura, T. Kimura, 1988. Screening of bacteria
with antiviral activity from fresh water samonid hatcheries. Microbiology
and Immunology. 32, 67-73.

</div>
<span class='text_page_counter'>(21)</span><div class='page_container' data-page=21>

Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology. In: P. H. A. Sneath, N. S.
<i>Mair, M. E. Sharpe, and J. G. Holt (Eds). Bergey</i>’s Manual of Systematic
Bacteriology, , Vol 2, Baltimore: Williams and Wilkins, pp. 1209 - 1234.
<i>Kaneko T. and R.R. Cowell, 1973. Ecology of Vibrio parahaemolyticus in </i>

Chesapeake Bay. J .Bacteriol. 113: 24-32.

<i>Kaneko T. and R.R. Cowell, 1975. Adsorption of Vibrio parahaemolyticus </i>
onto chintin and copepods. Appl. Microbiol. 20: 693-699.

Karthik K., N. S. Muneeswaran, H. V. Manjunathachar, M. Gopi, A.
Elamurugan and S. Kalaiyarasu. 2014. Bacteriophages: Effective
Alternative to Antibiotics. Adv. Anim. Vet. Sci. 2 (3S): 1 – 7.

Karthik R, A. C. Pushpam, Y. Chelvan, M. C. Vanitha, 2016. Effcacy of
probiotic and nitrifer bacterial consortium for the enhancement of
<i>Litopenaeus Vannamei aquaculture. Int J Vet Sci Res 2(1): 001-006. </i>
Karthikeyan V., S.W. Santosh, 2009. Isolation and partila characterization of

<i>bacteriocin produced from Lactobacillus plantarum. African Journal of </i>
Microbiology Research, Vol 3: pp. 233 – 239.

Khuất Hữu Thanh, Nguyễn Đăng Phúc Hải, Bùi Văn Đạt, Võ Văn Nha, 2009.
Phân lập và tuyển chọn một số chủng vi khuẩn có đặc tính probiotics trong
tạo chế phẩm ni tơm sú. Tạp chí Khoa học Cơng nghệ Trường Đại học
Kỹ Thuật, số 74: 113-116.

kimura T., Yamano K., Nakano H., Momoyama K., Hiraoka M. & Inouye K.
1996. Detection of penaeid rod-shaped DNA virus (PRDV) by PCR. Fish
Pathology 31: 93–98.

Klaenhammer T.R., 1987. Plasmid-directed mechanisms for bacteriophage
defense in lactic streptococci. FEMS Microbiol. Rev. 46:313-325.

Klayraung S., H. Viernstein, J. Sirithunyalug and S. Okonogi, 2008. Probiotic
properties of Lactobacilli isolated from Thai traditional food. Sci Pharm,
Vol 76: pp. 485 – 503.

Klayraung, S., H. Viernstein, J. Sirithunyalug and S. Okonogi. 2008. Probiotic
properties of Lactobacilli isolated from Thai traditional food. Sci Pharm,
Vol 76: pp. 485 – 503.

Klein G., 2003. Taxonomy, ecology and antibiotic resistance of enterococci
from food and the gastro – intestinal tract. International Journal of Food
Microbiology, vol 88, pp. 123-131.

</div>
<span class='text_page_counter'>(22)</span><div class='page_container' data-page=22>

<i>“Adhesion and aggregation ability of probiotic strains Lactobacillus </i>
<i>acidophilus M92”. Journal of Applied Microbiology, vol 94, pp. 981-987. </i>
Kuipers O.P., G. Buist, J. Kok, 2000. Current strategies for improving food

bacteria. Res. Microbiol. 151, 815-822.

Kwai, L.T, Ung, E. H, Choo, S. W, Yew, S. M, Wee, W. Y, and Yap, K. P.,
<i>2014. An AP1, 2 &3 PCR Positive non - Vibrio parahaemolitycus bacteria </i>
with AHPND histopathology. Paper presented at the 9th Symposium on
<i>Diseases in Asian Non-Vibrio Parahaemolyticus gây bệnh hoại tử gan tụy </i>
cấp (AHPND) trên tôm nuôi 698 Aquaculture (DAA9), Ho Chi Minh city,
Vietnam, 24-28 November, 2014. Book of abstract, p. 77.

Lavilla–Pitogo C.R., L. D. De la Pena, 1998. Bacterial disease in shrimp
<i>(Penaeus monodon) culture in Philippines. Fish Pathol. 33 (4), 405-411. </i>
Lê Hồng Phước, Lê Hữu Tài và Nguyễn Văn Hảo, 2012. Diễn biến của hội

chứng hoại tử gan tụy trong ao ni tơm thâm canh ở huyện Trần Đề, tỉnh
Sóc Trăng. Trung tâm Quốc gia Quan trắc Cảnh báo Môi trường và Phòng
ngừa Dịch bệnh Thủy sản Khu Vực Nam Bộ.

Lê Hữu Tài, Nguyễn Văn Hảo và Lê Hồng Phước, 2012. Một số kết quả chẩn
đốn mơ bệnh học và phân tích siêu cấu trúc của hội chứng hoại tử gan tụy
trên tôm nuôi ở Đồng Bằng Sông Cửu Long.

/>%20hoai%20tu%20gan%20tuy___.pdf (truy cập ngày 19/9/2017).

Lê Ngọc Thùy Trang, Phạm Minh Nhựt, 2014. Phân lập và khảo sát các yếu tố
<i>ảnh hưởng đến khả năng sản sinh hợp chất kháng khuẩn của Lactobacillus </i>
<i>plantarum. Tạp chí sinh học. 36 (97-106). </i>

Lê Tấn Hưng, Võ Thị Hạnh, Lê Thị Bích Phương, Trương Thị Hồng Vân, Võ
Minh Sơn. 2003. Nghiên cứu sản xuất chế phẩm probiotic BioII và kết quả

thử nghiệm trên ao nuôi tôm. Báo cáo khoa học hội nghị cơng nghệ sinh
học tồn quốc năm 2003. Nhà xuất bản Khoa học Kỹ thuật, 75-79.

Lê Xuân Phương, 2008. Vi sinh vật học môi trường. Chương trình Thư viện
Học liệu Mở Việt Nam. 122 trang. (truy cập
ngày 10/10/2017).

Leaño, E. M., and Mohan, C.V. (2012). Early mortality syndrome threatens
Asia’s shrimp farms. GlobalAquaculture Advocate, pp. 38 - 39.

</div>
<span class='text_page_counter'>(23)</span><div class='page_container' data-page=23>

<i>Vibrio parahaemolyticus in Pacific Oyster (Crassostrea gigas). An </i>
Undergraduate Thesis Submitted to Oregon State University.153 pages.
<i>Lee K.K., Y.L. Chen and P.C. Liu, 1999. Hemostasis of tiger prawn Penaeus </i>

<i>monodon affected by Vibrio harveyi, extracellular products, and a </i>
toxiccysteine protease. Blood Cells Mol Dis 25: 180-192.

Lewus C. B., A. Kaiser and T. J. Montville, 1991. Inhibition of Food – borne
bacterial pathogens by bacteriocin from lactic acid bacteria isolated from
<i>meat. Applied and Environmental Microbiology, Vol. 57: 1683 – 1688. </i>
Lightner D. V., 1996. Viral diseases. In A Handbook of Pathology and

Diagnostic Procedures for Diseases of Penaeid Shrimp ed. McVey, A:
1-72. Baton Rouge, LA: World Aquaculture Society.

Lightner D.V., C. R.Redman, B. L.Pantoja, L. M.Noble, L. Nunan, Loc Tran,
2013. Documentation of an Emerging Disease (Early Mortality Syndrome)
in SE Asia & Mexico. 1-52.

Lightner D.V., R. M. Redman, C. R. Pantoja, B. L. Noble, Loc Tran, 2012.

Early Mortality Syndrome Affects Shrimp in Asia. Global Aquaculture
Advocate, January/February 2012:40.

Lindgren S., W. Dobrogosz, 1990. Antogonistic activities of lactic acid
bacteria in food and feed fermentation. FEMS Microbiol Letters. Volume
87, Issues 1–2, September 1990, Pages 149-163.

Liu S. Q., 2003. Review article: Practical implications of lactate and pyruvate
metabolism by lactic acid bacteria in food and beverage fermentations. Int.
J. Food Microbiol. 83, 115-131.

Loc Tran, L. Nunan, R. M. Redman, L. L. Mohney, C. R. Pantoja, K.
Fitzsimmons, D. V. Lightner, 2013. Determination of the infectious nature
of the agent of acute hepatopancreatic necrosis syndrome affecting penaeid
shrimp. Diseases of aquatic organisms. 105: 45–55.

Loc Tran, Phuc Hoang, Thinh Nguyen and Donald V. Lightner, 2013. Thí
nghiệm xác định đường lây của tác nhân gây bệnh của hội chứng hoại tử
gan tụy cấp (AHPNS) hày hội chứng tôm chết sớm (EMS),
/>c%20et%20al-HPhuc-EMS%20tom.pdf (ngày truy cập 19/9/2017)

</div>
<span class='text_page_counter'>(24)</span><div class='page_container' data-page=24>

Diseases of aquatic organisms. Vol. 105: 45-55, 2013.

Lombardo F., G. Gioacchini, O. Carnevali, 2011. Probiotic-based nutritional
effects on killifish reproduction. Fisheries and Aquaculture Journal, Vol.
2011: FAJ-33 1-11.

Lonvaud-Funel, A. 2001. Biogenic amines in wines: role of lactic acid bacteria.
FEMS Microbiology Letters 199, 9-13.

Ma C. W., Y. S. Cho and K. H. Oh. 2009. Removal of pathogenic bacteria and
<i>nitrogens by Lactobacillus spp. JK-8 and JK-11. Aquaculture. 287: 266–</i>
270.

Mahawar B. P. 2012. Multilocus sequence typing for differentiation of closely
<i>related species of indigenous probiotic Lactobacilli. Master science in </i>
Dairy Microbiology, Nation Dairy Research Institute, pp. 30 - 31.

Maldonado-Lobon, J. A., M. Gil-Campos, J. Maldonado, K. Flores-Rojas, M.
V. RodriguezBenitez, A. D. Valero, F. Lara-Villoslada, M. Olivares and J.
Fonolla (2014). Safety of consumption during the first months of life of an
<i>infant formula supplemented with Lactobacillus fermentum CECT5716. </i>
Evaluation at 3 years of age. Workshop on Probiotics, Prebiotics and
Health, Scientific Evidence. Valencia, Spanish Association of Probiotics
and Prebiotics.

Manefield M., L. Harris, S. A. Rice, R. De Nys and S. Kjelleberg, 2000.
Inhibition of luminescence and virulence in the black tiger prawn
<i>(Penaeus monodon) pathogen Vibrio harveyi by intercellular signal </i>
antagonists. Applied and Environmental Microbiology. 66: 2079-2084.
Martinis H., K. J. Swanepoel, W. Gunter. 2001. The geometry of minkowski

spaces - a survey. Part I. Volume 19, Issue 2, pp 97-142.

Maurilio Lara-Flores, Miguel AOlvera-Novoa, Beatrı_{́z EGuzmán-Méndez,}
<i>WilberthLópez-Madrid. 2003. Use of the bacteria Streptococcus faecium </i>
<i>and Lactobacillus acodophilus, and the yeast Saccharomyces cerevisiae as </i>
<i>growth promoters in Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture 216 </i>
(193-201).

<i>McCarter L., 1999. The multiple identities of Vibrio parahaemolyticus. J. Mol. </i>
Mirobial. Biotechnol. 1 (1999) 51-57.

</div>
<span class='text_page_counter'>(25)</span><div class='page_container' data-page=25>

<i>parahaemolyticus. Lett Appl Microbiol 28: 66-70. </i>

Metchnikoff E, 1908. Prolongation of life: Optimistic studies. William
Heinemann, London. 384 pages

Michetti, P., G. Dorta, P.H. Wiesel, D. Brassart, E. Verdu, M. Herranz, C.
Felley, N. Porta, M. Rouvet, A.L. Blum and I. Corthesy-Theulaz, 1999.
<i>Effect of whey-based culture supernatant of Lactobacillus acidophilus </i>
(johnsanii) La1 on Helicobacter pylori infection in humans. Digestion. 60:
203-209.

<i>Mishra and Prasad (2005). Application of in vitro methods for selection of </i>
<i>Lactobacillus casei strains as potential probiotics. Journal of food </i>
microbiol. 103(1): 109-115.

Mishra C., J. Lambert, 1996. Production of anti-microbial substances by
probiotics. Asia Pacific Journal of Clinical Nutrition, 5: 20-24.

Moriarty D., 1997. The role of microorganisms in aquaculture ponds.
Aquaculture 151: 333-349.

Mroz, Z., W. Krasucki, E. Grela, J. Matras and U. Eidelsburger, 1997. The
effects of propionic and formic acids as a blend (Lupro-Cid®) in graded
dosages on the health, performance and nutrient digestibility (ileal/overall)
in sows. In: Proc. Soc. Nutr. Physiol. 9, 169-181.

NACA, 2012. Final report: Asia Pacific Emergency Regional Consultation on

the Emerging Shrimp Disease: Early Mortality Syndrome (EMS)/Acute
Hepatopancreatic Necrosis Syndrome (AHPNS). Network of Aquaculture
Centres in Asia-Pacific. Bangkok, Thailand 9-10 August 2012. 131 pages.
Nash G., C. Nithimathachoke., C. Tungmandi., A. Arkarjamorn., P.
Prathanpipat and P. Ruamthaveesub, 1992. Vibriosis and its control in
<i>pond-reared Penaeus monodon in Thailand. In: M. Shariff, R.P. </i>
Subasinghe and J.R. Authur (eds.) Diseases in Asian Aquaculture 1. Fish
Health Section, Asian Fisheries Society, Manila, Philippines. 143-155.
Natesan Sivakumar, Muthuraman Sundararaman and Gopal Selvakumar, 2012.

<i>Probiotic effect of Lactobacillus acidophilus against Vibriosis in juvenile </i>
<i>shrimp (Penaeus monodon). African journal of Biotechnology. Vol. 1191. </i>
PP. 15811-15818.

</div>
<span class='text_page_counter'>(26)</span><div class='page_container' data-page=26>

Ngô Thị Phương Dung, Huỳnh Thị Yến Ly and Huỳnh Xuân Phong, 2011.
Phân lập và tuyển chọn vi khuẩn lactic có khả năng sinh chất kháng khuẩn.
Tạp chí khoa học Trường Đại học Cần Thơ. 19a: 176-184.

Nguyễn Khoa Diệu Hà, 2009. Nghiên cứu phân lập nhóm vi khuẩn lactic từ hệ
tiêu hóa cá tra thịt và giống, nước ao ni cá Tra có đặc tính phân hủy phân
<i>tử tín hiệu và đối kháng Edwardsiella ictaluri. Luận văn cao học chuyên </i>
ngành Nuôi trồng Thủy sản Trường Đại học Cần Thơ.

Nguyễn Lân Dũng, Nguyễn Đình Quyến và Phạm Văn Ty, 2000. Vi sinh vật
học, Nhà Xuất Bản Giáo Dục, 2000.

Nguyễn Trọng Nghĩa, Đặng Thị Hoàng Oanh, Trương Quốc Phú, Phạm Anh
Tuấn, 2015. Phân lập và xác định khả năng gây hoại tử gan tụy của vi khuẩn
<i>Vibrio parahaemolyticus phân lập từ tôm ni ở Bạc Liêu. Tạp chí khoa học </i>
Trường Đại học Cần Thơ. 39: 99-107.

Nguyễn Trọng Nho, Tạ Khắc Thường, Lục Minh Diệp, Võ Thị Nề, Nguyễn Thị
Liên và Nguyễn Thị Minh Hậu, 2002. Hỏi đáp về nuôi tơm sú. Nhà xuất
bản Nơng nghiệp, TP. Hồ Chí Minh, 34 trang.

<i>Nguyễn Tuấn Huy, 2014. Phân lập và tuyển chọn các chủng Lactobacillus có </i>
tiềm năng probiotic từ tôm sú. Luận văn cao học chuyên ngành Nuôi trồng
Thủy sản. Đại học Cần Thơ.

Nguyễn Văn Kiệm, Nguyễn Văn Kình và Nguyễn Văn Mùi, 2005. Giáo trình
Hóa Sinh Động Vật. Trường Đại Học Nông Nghiệp Hà Nội. 345trang.
Nguyễn Văn Minh, Lê Anh Tuấn, Đào Văn Toàn, Võ Ngọc Yến Nhi, Dương

Nhật Linh, Nguyễn Thị Ngọc Tĩnh, 2014. Khả năng kiểm soát sinh học
<i>Vibrio parahaemolyticus NT7 phân lập từ tôm thẻ bệnh hoại tử gan tụy </i>
<i>(AHPND) của chủng Bacillus polyfermenticus F27 phân lập từ giun quế. </i>
Kỷ yếu Hội thảo Ứng dụng Công nghệ sinh học trong Nông nghiệp và Phát
triển nơng thơn. TP Hồ Chí Minh, 30-31/1/2015.

Nguyễn Văn Thành và Nguyễn Ngọc Trai, 2012. Phân lập và tuyển chọn vi
<i>khuẩn Lactobacillus sp. có khả năng ức chế vi khuẩn gây bệnh gan thận </i>
mủ và đốm đỏ trên cá tra. Tạp chí khoa học Đại học Cần Thơ số 23a
224-234.

</div>
<span class='text_page_counter'>(27)</span><div class='page_container' data-page=27>

Niku-Paavola M.L., A. Laitila, T. Mattila-Sandholm, A. Haikara, 1999. New
<i>types of antimicrobial compounds produced by Lactobacillus plantarum. </i>
Journal of Applied Microbiology, 86: 29–35.

Nirunya, B., C. Suphitchaya and H. Tipparat, 2008. Screening of lactic acid
bacteria from gastrointestinal tracts of marine fish for their potential use as

probiotics. Journal of Science Technology. 30. 141-148.

Nogami K. and M. Maeda, 1992. Bacteria as Biocontrol agents for rearing
<i>larvae of the crab Portunus trituberculatus. Canadian Journal of Fisheries </i>
and Aquatic Sciences, 1992, 49(11): 2373-2376.

Nogami K., K. Hamasaki, M. Maeda, K. Hirayama, 1997. Biocontrol method in
<i>aquaculture for rearing the swimming crab larvae Portunus trituberculatus. </i>
Hydrobiologia, Volume 358, Issue 1–3, pp 291–295.

Noordiana N., A. B. Fatimah and A. S. Mun, 2013. Antibacterial agents
produced by lactic acid bacteria isolated from threadfin salmon and grass
shrimp. International Food Research Journal 20(1): 117-124.

Oktari. A., Y. Supriatin, M. Kamal and H. Syafrullah, 2017. The Bacterial
Endospore Stain on Schaeffer Fulton using Variation of Methylene Blue
Solution. Journal of Physics. 812: 1-6.

Osmanağaoğlu, Ö., Beyatli, Y. and Gündüz, U. (2001) Isolation and
<i>characterization of pediocin producing Pediococcus pentosaceus Pep1 from </i>
vacuum‐packed sausages. Tr J Biol 25, 133–143.

Panakorn S., 2012. Opinion article: more on early mortality syndrome in
shrimp. Aqua Culture Asia Pacific, Volume 8 No. 1: 8-10.

Parvathy Seema Nair and Puthuvallil Kumaran Surendran, 2005. Biochemical
characterization of lactic acid bacteria isolated from fish and prawn. Jounal
of culture collections. Volume 4, 2004-2005. pp. 48-52.

Phạm Hùng Vân (2009). PCR và real-time PCR – Các vấn đề cơ bản và các áp

dụng thường gặp. Nhà xuất bản y học.

Ponce A. G., M. R. Moreira, C. E. Valle and S. I. Roura, 2008. Preliminary
characterization of bacteriocin like substances from lactic acid bacteria
isolated from organic leafy vegetables. LWT - Food Science and
Technology (41)3: 432-441.

</div>
<span class='text_page_counter'>(28)</span><div class='page_container' data-page=28>

National Institute for Aquaculture Biotechnology, Mahidol University,
Bangkok, Thailand.

<i>Qin H., Zhang Z., Hang X., 2009. L. plantarum prevents enteroinvasive </i>
Escherichia coli-induced tight junction protein changes in intestinal
epithelial cell. BMC Microbio Journal; 9;63.

Rattanachaikunsopon. P and P. Phumkhachorn, 2010. Lactic acid bacteria: their
antimicrobial compounds and their uses in food production. Annals of
Biological Research. 1 (4) : 218-228.

<i>Reid G., 1999. The scientific basis for probiotic strains of Lactobacillus. Appl </i>
<i>Environ Microbiol 65: pp. 3763 – 3766. </i>

Rengpipat S., S. Rukpratanporn, S. Piyatiratitivorakul, P. Menasaveta, 2000.
<i>Immunity enhancement in black tiger shrimp (Penaeus monodon) by a </i>
probiont bacterium (Bacillus S11). Aquaculture 191, 271-288.

Richter, K.S., Mustapha, A., Liewen, M.B. and Hutkins, R.W. (1989) Properties
<i>of a bacteriocin produced by a Pediococcus sp. active against Listeria </i>
<i>monocytogenes. In Abstract Book, 89th Annual Meeting of the American </i>
Society for Microbiology. p. 8. New Orleans.

Ringø E., E. Strøm, J. A. Tabachek, 1995. Intestinal microflora of salmonids: a
review. Aquacult. Res. 26, 773-789.

Rodríguez E., J.L. Arqués, R. R. Rodríquez, M. Nũnez, M. Medin, 2003.
Reuterin production by lactobacilli isolated from pig faeces and evaluation
of probiotic traits. Lett. Appl. Micro biol. 37, 259-263.

<i>Roque A., A.Molina-Aja, C. Bolán-Mejía, B. Gomez-Gil, 2001. In vitro </i>
susceptibility to 15 antibiotics of vibrios isolated from Penaeid shrimps in
<i>Northwestern Mexico. Int. J. Antimicrob. Agents 17, 383–387. </i>

Ross R. P.,S. Morgan, C. Hill, 2002. Preservation and fermentation: past,
present and future. International Journal of Food Microbiology, London, v.
79, n. 1-2, p. 3-16.

Saarela M.,Mogensen G., Fonde R., 2000. Probiotic bacteria: safety functional
and technological properties. Journal of Biotechnology, vol 84, pp
197-215.

Sabo S. D., M. Vitolo, J. J. González, R. P Oliveira, 2014. Overview of
<i>Lactobacillus plantarum as a promising bacteriocin producer among lactic </i>
acid bacteria. Food Research International, 64, pp.527 – 536.

</div>
<span class='text_page_counter'>(29)</span><div class='page_container' data-page=29>

microflora of Tilapia reared in fresh and sea water. Bull. Jpn. Soc. Sci. Fish.
46, 313-317.

<i>Sakata T., 1990. Microflora in the digestive tract of fish and shellfish. In: Lesel, </i>
R. (Ed.), Microbiology in Poecilotherms. Elsevier, Amsterdam, pp.
171-176.

Sampo L. A., C. Owehand, S. Salminen and A. V Wright, 2011. Lactic Acid
Bacteria: Microbiological and Functional Aspects, Fourth Edition. CRC
Press, p. 124-125.

Sandine W.E., P.C. Radich, P.R. Elliker, 1972. Ecology of the lactic
streptococci. A review. J. Milk Food. Techn. 35, 176-185.

Savadogo A., A. C. Ouattara, H. I. Bassole, S. A. Traore, 2006. Bacteriocins
and lactic acid bacteria. African Journal of Biotechnology, 5 (9), pp.678 -
683.

Scharifuzzaman S.M., A. Abbass, J. W. Tinsley, B. Austin, 2011. Subcellular
components of probiotics Kocuria SM1 and rhodococcus SM2 induce
<i>protective immmunity in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss, Walbaum) </i>
<i>against Vibrio anguillarum. Fish and shellfish Immunology: 30, 347-353. </i>
Schat K. A., and T. J. Myers, 1991. Avian Intestinal Immunity. Crit. Rev. Poult.

Biol. 3:19–34.

<i>Schillinger U. and F. K. Lucke, 1989. Antibacterial activity of Lactobacillus </i>
<i>sake isolated from meat. Applied and Environmental Microbilogy, Vol. 55, </i>
1901-1906.

Schryver, D. P., Defoirdt, T., and Sorgeloos, P. (2014). Early mortality
syndrome outbreaks: a microbial management issue in shrimp farming
PLoS pathogens, 10(4): e1003919.

Schved, F., Lalazar, Y., Henis, Y. and Juven, B.J. (1993) Purification, partial
characterization and plasmid‐linkage of pediocin SJ‐1, a bacteriocin
<i><b>produced by Pediococcus acidilactici. J Appl Bacteriol 74, 67–77.</b></i>

Shaun M. Moss, Brad R. LeaMaster, James N. Sweeney., 2000. Relative
Abundance and Species Composition of Gram‐Negative, Aerobic Bacteria
<i>Associated with the Gut of Juvenile White Shrimp Litopenaeus </i>
<i>vannamei Reared in Oligotrophic Well Water and Eutrophic Pond Water. </i>
Journal of the world aquaculture society. 255-263.

</div>
<span class='text_page_counter'>(30)</span><div class='page_container' data-page=30>

detection of AHPND bacteria in NACA.
/>w-pcr-detection-method-for-ahpnd.

Sivakumar, N., Sundararaman, M and Selvakumar, G., 2012. Probiotic effect of
<i>Lactobacillus acidophilus against vibriosis in juvenile shrimp (Penaeus </i>
<i>monodon). African Journal of Biotechnology Vol. 11(91), pp. </i>
15811-15818.

Skytta E., A. Haikara, T. Mattila-Sandholm, 1993. Production and
<i>characterization of antibacterial compounds produced by Pediococcus </i>
<i>damnosus and Pediococcus pentosaceus. Journal of Applied Bacteriology, </i>
74: 134–142.

Sở NN&PTNT Khánh Hịa, 2017. Tình hình dịch bệnh trên tơm ni và biện
pháp phịng trị. Hội thảo khoa học “Tình hình dịch bệnh trên tơm ni và

biện pháp phịng trị”, Nha Trang 5/7/2017.

/>947257.3 (truy cập ngày 10/10/2017).

Somsiri, T., D. T. H. Oanh, S. Chinabut, N. T. Phuong, M. Shariff, F. Yusoff,
K. Bartie, M. Giacomini, M. Robba, S. Bertone, G. Huys and A. Teale.
2006. A simple device for sampling soft pond bottom sediment.

Aquaculture, 258: 650-654.

Song J.,Lee S –C, Kang J. –W.,Beak H-J, Suh J –W. (2004), “Phylogenetic
analysis of Streptomyces spp. Isolated from potato scab lesions in Korea
on basis of 16S rDNA gen and 16S-23S rDNA internally transceibed
spacer seuqnces”, International Journal of Systematic and Evolutionary
Microbiology, vol.54, pp. 203-209.

Sonomoto K and A. Yokota, 2011. Lactic acid bacteria and Bifidobacteria:
Current progress in advanced research. Caister academic press. ISBN
978-1-904455-82.

Soto-Rodriguez S.A., N. Simoes., A. Roque and B. Gomez-Gil, 2006.
<i>Pathogenicity andcolonization of Litopenaeus vannamei larvae by </i>
luminescent vibrios. Aquaculture 258: 109-115.

Stevens K. A., N. A. Klapes, B. W. Sheldon, and T. R. Klaenhammer, 1992.
Antimicrobial action of nisin against Salmonella typhimurium
lipopolysaccharide mutants. Appl Environ Microbiol; 58(5): 1786–1788.

</div>
<span class='text_page_counter'>(31)</span><div class='page_container' data-page=31>

<i><b>Bacteriol 74, 406–410. </b></i>

Sung H. H., S. F. Hsu, C. K. Chen, Y. Y Ting, W. L. Chao, 2001. Relationship
<i>between disease outbreaks in cultured tiger shrimp (Penaeus monodon) and </i>
<i>the composition of Vibrio communities in pond water and shrimp </i>
hepatopancreas druring cultivation. Aquaculture 192, 101-110.

Tạ Văn Phương, 2016. Phát triển quy trình cơng nghệ Biofloc và khả năng ứng
<i>dụng trong nuôi tôm thẻ chân trắng (Litopenaeus vannamei). Luận án tiến </i>
sĩ chuyên ngành Nuôi trồng Thủy sản, Trường Đại học Cần Thơ, 216 trang.

Talpur A. D., A. J. Memon, M. I. Khan, M. Ikhwanuddin, M. M. Danish, Daniel
and A.B Abol-Munafi, 2012. Inhibition of pathogens by lactic acid bacteria
and application as water additive multi isolates in early stages larviculture
<i>of P. pelagicus (Linnaeus, 1758). The Journal of Animal & Plant Sciences, </i>
22(1): 2012, Page: 54-64.

Tambekar, D. H., S. A. Bhutada, S. D. Choudhary and M. D. Khond, 2009.
Assessment of potential probiotic bacteria isolated from milk of domestic
animals. J Appl Biosci. 15: 815–819.

Taniguchi H., H. Hirano, S. Kubomura, K. Higashi, Y.
Mizuguchi, 1986. Comparison of the nucleotide sequences of the genes for
the thermostable direct hemolysin and the thermolabile hemolysin
<i>from Vibrio parahaemolyticus. Microbial Pathogenesis, 1, 425 432. </i>

<i>Tendencia E.A. and A.D. Lourdes, 1997. Isolation of Vibrio spp from Penaeus </i>
<i>monodon (Fabricius) with reddisease syndrome. Aquaculture Volume 154, </i>
Issue 2, 30 July 1997: 107-114.

Thakur A.B., B.B. Vaidya & S.A. Suryawanshi, 2002. Pathogenicity and
<i>antibiotic susceptibility of Vibrio species isolated from moribund shrimp. </i>
Indian Journal of Marine Sciences, Vol. 32(1) pp. 71-75.

Tinwongger, S., Thawonsuwan, J., Kongkumnerd, J., Nozaki, R., Kondo, H.,
<i>and Hirono, I., 2014. Characterization of vỉulence factor of AHPND Vibrio </i>
<i>parahaemolyticus which is the causative agent of shrimp disease. Paper </i>
presented at the 9th Symposium on Diseases in Asian aquaculture (DAA9),
Ho Chi Minh city, Viet Nam 24-28 November, 2014. Book of abstract, p.
73.

Tổng cục Thủy sản, 2012. Tình hình thực hiện kế hoạch năm 2012, Phương
hướng nhiện vụ, Giải pháp chủ yếu thực hiện kế hoạch năm 2013.

</div>
<span class='text_page_counter'>(32)</span><div class='page_container' data-page=32>

trang.

Tổng cục Thủy sản, 2017. Tổng sản lượng thủy sản 10 tháng năm

2016. />v%E1%BA%AFn/doc-tin/006296/2016-11-08/tong-san-luong-thuy-san-10-thang-nam-2016-uoc-dat-55-trieu-tan (truy cập ngày 10/10/2017).
<i>Trần Thị Ái Liên, 2011. Nghiên cứu đặc điểm và vai trò của Lactobacillus </i>

<i>acidophilus trong chế phẩm probiotic. Luận văn thạc sĩ chuyên ngành vi </i>
sinh vật Trường Đại học sư phạm Thành phố Hồ Chí Minh.

Trần Thị Linh Giang, và Dương Viết Phương Tuấn, 2015. Nghiên cứu đặc điểm
gây bệnh và dịch tể của bệnh tôm chết sớm (EMS) tại tỉnh Quảng Bình
nhằm đề xuất quy trình chẩn đốn và phịng trị .Tạp chí khoa học Đại học
Huế. 104 (125-130).

Trần Thị Tuyết Hoa, 2011. Quy trình Nested-PCR phát hiện vi rút gây bệnh
đốm trắng (WSSV) và nội chuẩn giáp xác mười chân trên nhiều đối tượng
cảm nhiễm. Tạp chí Khoa học 2011:17a 1-8.

Tran Thi Tuyet Hoa, Mark P. Zwart, Nguyen T. Phuong, Dang T. H. Oanh, Mart
C. M. de Jong and Just M. Vlak, 2011. Mixed-genotype white spot
syndrome virus infections of shrimp are inversely correlated with disease
outbreaks in ponds. Journal of General Virology. 92, 675–680.

<i>Trịnh Hùng Cường, 2011. Phân lập vi khuẩn Lactobacillus sp. trên tơm sú ni </i>
<i>cơng nghiệp có khả năng kháng vi khuẩn gây bệnh Vibrio sp. Luận văn Cao </i>

học chuyên ngành Công nghệ sinh học. Đại học Cần Thơ.

Twedt R. M., P. L. Spaulding, and H. E. Hall, 1969. Morphological, culture,
<i>biochemical, and serological comparison of Japanese strains of Vibrio </i>
<i>parahaemolyticus with related cultures isolated in the United States. J. </i>
Bacteriol. 98:511-518.

Van Reenen C.A., L.M.T. Dicks, and M.L. Chikindas, 1998. Isolation,
purification and partical characterization of plantaricin 423, a bacteriocin
<i>produced by L. plantarum. Journal of Applied Microbiology. pp 1131-1137. </i>
<i>Vanderzant C. and R. Nickelson. 1972. Survival of Vibrio parahaemolyticus in </i>
shrimp tissue under various environmental conditions. Appl. Microbiol.
23:34-37.

</div>
<span class='text_page_counter'>(33)</span><div class='page_container' data-page=33>

Vázquez J. A., M. P. González and M. A. Murado, 2005. Effects of lactic acid
bacteria cultures on pathogenic microbiota from fish. Aquaculture, 245: pp.
149 – 161.

<i>Venema K., G. Venema, J. Kok, 1997. Lactococcal bacteriocins: mode of action </i>
and immunity. Trends Microbiol., 3, pp.299–304.

<i>Véron M. M., 1965. La position taxonomique des Vibrio et de certaines </i>
bacteries comparables. C. R. Acad. Sci. 2615243- 5246.

Verschuere L., G. Rombaut, P. Sorgeloos, and W. Verstraete, 2000. Probiotic
bacteria as biological control agents in aquaculture. Microbiol. Mol. Biol.
Rev, 64: 665-671.

Vieira F. N.,C. C. Buglione, J. P. Mourino, A. Jatobá, M. L. Martins, D. D.
Schleder, E. R. Andreatta, M. A. Barracoand L. A. Vinatea, 2010. Effect of

probiotic supplementeddietonmarineshrimpsurvival after challenge with
<i>Vibrio harveyi. Arquivo Brasileiro deMedicina Veterinária e Zootecnia </i>
62:631-638.

Viện Kinh tế và Quy hoạch thủy sản, 2015a. Quy hoạch vùng nuôi tôm nước lợ
vùng Đồng bằng sông Cửu Long đến năm 2020, tầm nhìn 2030. 139 trang.
Viện Kinh tế và Quy hoạch thủy sản, 2015b. Báo cáo tổng hợp Quy hoạch phát

triểnnuôi trồng thủy sản các tỉnh Miền Trung đến năm 2020 và định hướng
đến 2030. 136 trang.

Vine N.G., W.D.Leukes, H.Kaiser. 2004. In-vitro growth characteristics of five
candidate aquaculture probiotics and two fish pathogens grown in fish
intestinal mucus. FEMS Microbiol. Lett. 231, 145–152.

Vũ Ngọc Út, 1999. Ứng dụng các thành tựu sinh học tế bào và vi sinh học vào
lĩnh vực nuôi trồng thủy sản. Thông tin Atemia-Tôm. Đại Học Cần Thơ, số
37, 38. Trang 34-58.

<i>Wang CY, Shie HS, Chen SC, Huang JP, Hsieh IC, Wen MS, 2007. Lactococcus </i>
<i>garvieae in humans: possible association with aquaculture outbreaks. Int J </i>
Clin Prac; 61:68–73.

Weisburg, W. G., S. M. Barns, D. A. Pelletier, and D. J. Lane. 1991. 16S
ribosomal DNA amplification for phylogenetic study. J.
Bacteriol. 173:697-703.

</div>
<span class='text_page_counter'>(34)</span><div class='page_container' data-page=34>

Whetstone J.M., G. D. Treece, C. L. Browdy and A. D. Stokes, 2002.
Opporrunities and Contrains in Marine Shrimp Farming. Southern
Regional Aquaculture Center (SRAC) publication No. 2600USDA. 8 p.

<i>William L.A. and P.A. LaRock, 1985. Temporal Occurrence of Vibrio Species </i>

<i>and Aeromonas hydrophila in Estuarine Sediments. Applied and </i>
environmental microbiology 50 (6): 1490-1495.

Wiss, A., H. P. Lettner, W. Kramer, H. K. Mayer and W. Kneifel. 2005.
Molecular method used for the identification of Potentially probiotic
<i>Lactobacillus reuteri strains. Food Technol. Biotechnol, 43: pp. 295 – 300. </i>
Wong H.C., S.H. Liu., T.K. Wang., C.L. Lee., C.S. Chiou and D.P Liu, 2000.
<i>Characteristics of Vibrio parahaemolyticus O3: K6 from Asia. Appl. </i>
Environ. Microbiol. 66: 3981-3986.

Wongteerasupaya, C., Pungchai, P., Withyachumnarnkul, B., Boonsaeng, V.,
Panyim, S., Flegel, T. W. & Walker, P. J. (2003). High variation in
repetitive DNA fragment length for white spot syndrome virus (WSSV)
isolates in Thailand. Dis Aquat Organ 54, 253–257.

<b>Woo DK, T.L Phang, D.J Trawick, R.O Poyton, 2009. Multiple pathways of </b>
mitochondrial-nuclear communication in yeast: Intergenomic signaling
involves ABF1 and affects a different set of genes than retrograde
<i>regulation. Biochim Biophys Acta1789(2):135-45. </i>

Wood B. J. and W. H. N. Holzapfel, 1995. The Genera of Lactic Acid Bacteria.
Springer Science & Business Media: 7-8.

Wu, C.‐W., Yin, L.‐J. and Jiang, S.‐T. (2004) Purification and characterization
<i>of bacteriocin from Pediococcus pentosaceus ACCEL. J Agric Food </i>
<i><b>Chem 52, 1146–1151. </b></i>

Xie M. W., F. Jin, H. HWang, S. Hwang, V. Anand, M. C. Duncan, J. Huang,

<b>2005. Insights into TOR function and rapamycin response: chemical </b>
<i>genomic profiling by using a high-density cell array method. Proc Natl </i>
<i>Acad Sci U S A 102(20):7215-20. </i>

Yasuda K. and N. Taga, 1980. A mass culture method for Artemia salina using
bacteria as food. Bull. Soc. Franco-Jap. Oceanogr, 18: 53-62.

Yew-Hu Chien. 2013, Aquaculture environment remedies for disease
prevention and control. APA conference Ho Chi Minh City ,10-13
December 2013.

</div>
<span class='text_page_counter'>(35)</span><div class='page_container' data-page=35>

<i>infective endocarditis: Lactococcus garvieae. Int J Cardiol; 114:286–7. </i>
Zapata A. A., 2013.Antimicrobial Activities of Lactic Acid Bacteria Strains

<i>Isolated from Nile Tilapia Intestine (Oreochromis niloticus). Journal of </i>
Biology and Life Science.Vol. 4, No. 1, 164-171.

Zorriehzahra M.J. and R. Banaederakhshan, 2015. Early Mortality Syndrome
(EMS) as new Emerging Threat in Shrimp Industry. Advances in Animal
and Veterinary Sciences. (3): 64 – 72.

Zulkifii, Yudhanto, Soetharyo and Adinono, 2009. Reduced stall MIPS
architechture using pre-fetching accelerator, international conference on
electrical engineering and informatics, IEEE, ISBN: 978-1-4244-4913-2,
pp.611-616.

</div>

<!--links-->

<a href=' 10-thang-nam-2016-uoc-dat-55-trieu-tan'>2016. </a>