Практическое
инфекции.

занятие

№3.

Профилактика

контактной

и

имплантационной

Цель занятия. Изучить методы обработки рук хирурга, подготовки хирурга к
хирургическому вмешательству, способы обработки операционного поля и используемые
при этом антисептики. Изучить особенности устройства и организации работы
операционного блока и перевязочных. Научить и овладеть современными методами
предстерилизационной обработки и стерилизации инструментария, шовного материала,
операционного белья.
Студенты должны знать: Различные способы обработки рук хирурга, преимущества и
недостатки каждого из способов, особенности их применения, этапы обработки рук
хирурга и операционного поля, используемые для этой цели антисептики, их формы и
концентрацию. Современные способы и средства стерилизации. Устройство для
стерилизации и принципы их действия. Способы укладки биксов, стерилизации
хирургических инструментов, белья, шовного материала, оборудования, способы контроля
стерильности.
Студенты должны уметь: Выполнить обработку рук перед операцией по предложенному
способу и с использованием различных химических антисептиков. Уметь обработать
операционное поле по Филончикову- Гроссиху и Баккалу. Производить

предстерилизационную подготовку инструментов
и белья, укладывать биксы,
изготавливать
марлевые шарики, тампоны, салфетки, осуществлять контроль за
стерильностью материала с помощью современных методов.
Для предупреждения контактного инфицирования необходимо, чтобы было
стерильным (т.е. свободным от инфекции) всё, что соприкасается с раной. Это достигается
специальной обработкой операционного белья, перевязочного и шовного материала,
перчаток, инструментов, обработкой рук хирурга и операционного поля.
Стерилизация – полное освобождение от микроорганизмов (в том числе и живых
спор) всех предметов, растворов, материалов. Дезинфекция предусматривает уничтожение
патогенной микрофлоры.
Стерилизация инструментов, перевязочного материала и белья включает следующие
этапы:
I – предстерилизационная подготовка материала;
II – укладка и подготовка к стерилизации;
III – стерилизация;
IV – хранение стерильного материала.
Все эти этапы выполняются в соответствии с отраслевым стандартом
« Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения».
Стерилизация инструментов.
Этап I – предстерилизационная подготовка. Её цель – тщательная механическая
очистка инструментария, шприцев, инъекционных игл и пр., удаление пирогенных веществ
и вируса гепатита.
Бывшие в употреблении, но неинфицированные инструменты моют проточной водой
щётками в отдельной раковине в течение 5 мин и затем на 15 – 20 мин замачивают в одном
из специальных моющих растворов
(комплекс пергидроля или 2,5% раствора перекиси водорода с моющим средством
«Новость», «Астра"), подогретым до 500С. После замочки инструменты моют в том же
растворе ершами, щётками, затем в течение 5 мин ополаскивают тёплой водой и в течение

1 мин прополаскивают в дистиллированной воде. После этого инструменты помещают в
суховоздушный стерилизатор при температуре 850С для высушивания, после чего они
готовы к стерилизации.


Инструменты, загрязненные гноем или кишечным содержимым, предварительно
помещают в специальные емкости с 0,1% раствором диоцида или 5% раствором лизола на
30 мин. Затем в этом же растворе их моют ершами, щетками, ополаскивают проточной
водой и опускают в один из моющих растворов, проводя дальнейшую обработку по
описанной выше методике.
Инструменты после операции, проведенной у больного с анаэробной инфекцией,
замачивают на 1 ч в специальном растворе, состоящем из 6% раствора перекиси водорода
и 0,5% раствора моющего средства, затем моют щеткой в этом же растворе и кипятят 90
мин. Лишь после этого инструменты готовят к стерилизации
так же, как
неинфицированные инструменты. Через 1 сутки (время для прорастания спор), их
подвергают автоклавированию или кипячению (дробная стерилизация).
Пункционные инъекционные иглы после употребления промывают с помощью шприца
теплой водой, а затем 1% раствором натрия гидрокарбоната; канал иглы прочищают
мандреном, промывают 0,5% раствором нашатырного спирта и проточной водой. После
этого иглу со вставленным мандреном кипятят в течение 30 мин в 2% растворе натрия
гидрокарбоната, а затем через 8-12 ч - повторно в дистиллированной воде в течение 40 мин
и высушивают, после чего канал иглы просушивают путем продувания эфиром или спиртом
с помощью шприца.
Для контроля полноты удаления крови с предметов, прошедших предстерилизационную
подготовку, используют бензидиновую пробу: на предмет наносят 3 капли 1% раствора
бензидина и перекиси водорода. Появление сине-зеленой окраски указывает на следы
крови, оставшейся на предметах. В этом случае необходима повторная обработка.
Этап II – укладка и подготовка к стерилизации. Для стерилизации в сухожаровых
стерилизаторах инструменты помещают в металлические коробки, укладывая их

вертикально в один слой.
Для стерилизации паром под давлением в паровых стерилизаторах (автоклавах)
инструменты заворачивают в хлопчатобумажную ткань в виде пакета и выкладывают на
металлический поднос или сетку.
Этап III – стерилизация. Стерилизация инструментов, игл, стеклянной посуды
проводится в сухожаровых шкафах – стерилизаторах при температуре 1800C в течение 60
мин (рис. 4.).

Рис. 4. Сухожаровый шкаф - стерилизатор.


Стерилизацию инструментов можно производить в паровом стерилизаторе (автоклаве).
При давлении 2 атм (что соответствует температуре 132,90C) в течение 20 мин.
Методы стерилизации в сухожаровых и паровых стерилизаторах следует рассматривать
как основные. Метод стерилизации кипячением используют в небольших лечебных
учреждениях, где нет централизованной стерилизационной. Инструменты кипятят в 2%
растворе соды в течение 40 мин с момента закипания.
Режущие инструменты (скальпели, ножницы) при стерилизации обычными методами
затупляются, поэтому ее проводят практически без термической обработки. После
предстерилизационной подготовки инструменты погружают в 96% этиловый спирт на 30
мин или в тройной раствор на 3 ч. Допускается лишь краткосрочное кипячение режущих
инструментов в дистиллированной воде без соды в течение 10 мин, затем их помещают в
96% этиловый спирт на 30 мин.
В экстренных случаях, когда невозможно обеспечить стерилизацию инструментов ни
одним из указанных способов, используют метод обжигания. В металлический тазик или
лоток наливают 15-20 мл спирта, укладывают несколько инструментов на дно и поджигают
спирт. Метод недостаточно надежен, поэтому к нему прибегают в исключительных
случаях.
Этап IV – хранение стерильного материала. Стерильный материал хранят в
специальном помещении. Стерильность материала в биксах (если они не открывались)

сохраняется в течение 48 ч.

Стерилизация шприцев, систем для трансфузии и изделий из резины (катетеров,
дренажей, перчаток).
В современных условиях, как правило, используют шприцы, системы для трансфузии и
изделия из резины (перчатки, катетеры, дренажи и пр.), стерилизованные в заводских
условиях (разового пользования).
При необходимости стерилизация шприцев (в разобранном виде) и систем для
трансфузии может производиться в сухожаровых шкафах или в паровом стерилизаторе.
Основной метод стерилизации изделий из резины (дренажи, катетеры, перчатки) –
автоклавирование. В исключительных случаях их подвергают кипячению в течение 15 мин.
Стерилизация инструментов и предметов, не подлежащих термической обработке.
Стерилизация инструментов и предметов, не подлежащих термической обработке
(эндоскопы, торакоскопы, лапараскопы и пр.), осуществляют в специальном газовом
стерилизаторе. Предметы для стерилизации помещают в герметичную стерилизационную
камеру, которую заполняют окисью этилена. Время экспозиции – 16 ч при температуре
180С. Стерилизация может проводиться также смесью окиси этилена и бромида метилена
при температуре 550С в течение 6 ч.
Стерилизация инструментов и оптических аппаратов может быть проведена в спиртовом
растворе хлоргексидина и первомуре. При такой стерилизации инструменты и оптические
приборы помещают в металлические коробки с крышками и заливают раствором (чтобы он
полностью покрывал их).
Стерилизация перевязочного материала, операционного белья.
К перевязочному материалу относятся: марлевые шарики, салфетки, тампоны, турунды,
бинты. К операционному белью относят халаты хирургические, простыни, полотенца,
маски, шапочки, бахилы. Материалом для их изготовления служат хлопчатобумажные
ткани.
Этап I – предстерилизационная подготовка материала. Перевязочный материал
готовят из марли, предварительно разрезанной на кусочки. Марлю складывают,
подвертывая края внутрь, чтобы не было свободного края (для предотвращения осыпания



волокон ткани). Для удобства подсчета расходуемого во время операции материала его
укладывают перед стерилизацией определенным образом: шарики – в марлевые мешочки
по 50-100 штук, салфетки – в связки по 10 штук. Халаты, простыни, пеленки, полотенца для
стерилизации складывают в виде рулонов, чтобы их легко можно было развернуть при
использовании.
Этап II – укладка и подготовка материала к стерилизации. Перевязочный материал
и операционное белье укладывают в биксы (рис. 5.).
Существуют следующие типы укладки биксов.
Универсальная укладка. При универсальной укладке в бикс помещают материал,
предназначенный для одной небольшой типичной операции (например: аппендэктомия,
грыжесечение и пр.).
Целенаправленная укладка. При этом виде укладки в бикс закладывают необходимый
набор перевязочного материала и операционного белья, предназначенного для
производства конкретной операции (например: бикс с материалом для резекции желудка,
бикс с материалом для пульмонэктомии и пр.). Такую укладку обычно применяют для
больших плановых операций.
Видовая укладка. При видовой укладке в бикс укладывают определенный вид
перевязочного материала или белья (например: бикс с халатами, бикс с салфетками, бикс с
шариками и пр.).
Этап III – стерилизация. Перевязочный материал и операционное белье стерилизуют в
автоклаве в биксах с открытыми решетками в течение 20 мин при давлении 2 атм
(температура 132,90С.).
Этап IV – хранение стерильного материала. По окончании стерилизации биксы
вынимают, сразу закрывают решетки и переносят их на специальный стол для стерильного
материала. Хранят бикса в шкафах в специальной комнате. Допустимый срок хранения
перевязочного материала и белья, если бикс не вскрывался, - 48 ч с момента окончания
стерилизации.


Рис. 5. Биксы Шиммельбуша.
В настоящее время также в качестве методов стерилизации используют такие
современные способы как стерилизация озоном, ионизирующим, ультразвуковым и
ультрафиолетовым излучением.


Стерилизация озоном. Этот метод основан на свойстве озона, как исключительно
сильного окислителя, а также его способности создавать ультранизкую температуру в
стерилизуемой среде (-1800С). Озон довольно легко окисляет аминокислоты (как
свободные, так и входящие в состав белков), активно реагирует с нуклеиновыми кислотами
и особенно с липидами, являющимися основными компонентами цитоплазматических
мембран, что в совокупности с действием низких температур приводит к гибели
микроорганизмов. Этот метод не требует расходных материалов и химически стойких
дезинфектантов, подлежащих утилизации, не требует отмывки изделий или аэрации после
стерилизационного цикла. Таким способом стерилизуют хирургические инструменты с
микронной заточкой, эндоскопическое и лапароскопическое оборудование, катетеры, не
выдерживающие температурной обработки воздухом или паром под давлением.
Стерилизация ионизирующим излучением. Этот метод основан на повреждении ДНК
микроорганизмов и непосредственного воздействия на их клеточную стенку с помощью
ионизирующего излучения (γ-лучей). Применяют для стерилизации лапароскопического
оборудования, эндоскопических инструментов (рис. 6.).

Рис. 6. Устройство для стерилизации ионизирующим излучением.
Стерилизация ультразвуком. При этом методе стерилизуемый предмет помещается в
раствор, и стерилизация происходит за счет воздействия ультразвукового излучения.
Излучаемые ультразвуковым излучателем колебания вызывают возникновение в жидкой
среде пульсирующих ударных волн. При воздействии волн происходит разрушение
клеточных мембран микроорганизмов и удаление последних с поверхности инструментов
за счёт воздействия динамических нагрузок. Одновременно под воздействием ультразвука
происходит ионизация воды, вследствие чего прекращаются окислительно–

восстановительные процессы в микробных клетках. Является наиболее эффективным
методом стерилизации предметов сложной конфигурации, выполненных из различных
материалов (металл, стекло, пластмасса).
Стерилизация ультрафиолетом. Этот метод основан на облучении микроорганизмов
ультрафиолетовым излучением определённой интенсивности. В результате такого
облучения микроорганизмы теряют способность воспроизводства и погибают. На
сегодняшний день ультрафиолетовое излучение - один из самых эффективных и
безопасных способов стерилизации. Достоинство этого метода заключается также и в
отсутствии вредного воздействия на человека. Таким способом стерилизуют хирургические
инструменты с микронной заточкой, эндоскопическое и лапароскопическое оборудование
(рис. 7, 8.).


Рис. 7. Ультрафиолетовый стерилизатор.

Рис. 8. Стерилизация инструментов ультрафиолетовым облучением.
Контроль стерильности. Контроль стерильности материала и режима стерилизации в
автоклаве проводится прямым и непрямым методами.
Прямой метод – бактериологический; проводится посев с перевязочного материала и
белья или используются бактериологические тесты. При проведении бактериологических
тестов используют пробирки с известной спороносной непатогенной культурой
микроорганизмов, которые погибают при определенной температуре. Пробирки помещают
в бикс, а после окончания стерилизации извлекают и направляют в лабораторию.
Отсутствие роста микробов свидетельствует о стерильности материала. Этот тест проводят
один раз в 10 дней.
Непрямые методы. Эти методы контроля стерильности материала применяют
постоянно при каждой стерилизации. Для этого используют вещества с точкой плавления,
близкой к 1200С: бензойную кислоту (1200С), резорбцин (1190С), антипирин (1100С). Эти



вещества в пробирках (или в ампулах) помещают в бикс между слоями стерилизуемого
материала. Расплавление порошка и превращение его в сплошную массу указывает на то,
что температура в биксе была равна точке плавления контрольного вещества или
превышала ее, то есть достигала 110-1200С.
В настоящее время контроль стерильности материала и режима стерилизации
осуществляется с помощью специальных химически одноразовых термоиндикаторов,
необратимо изменяющих свой цвет при соблюдении условий стерилизации. Индикаторы
представляют собой прямоугольные полоски бумажно-пленочного основания с
нанесенными на лицевой стороне двумя цветными метками (индикаторная метка и элемент
сравнения) и маркировкой – наименованием индикатора, обозначением метода
стерилизации и параметрами стерилизационной выдержки.
При стерилизации в сухожаровых шкафах используют термоиндикаторы,
изменяющие свой цвет при температуре 1800 С.
Индикаторы паровой стерилизации предназначены для оперативного визуального
контроля соблюдения критических переменных процесса паровой стерилизации –
температуры стерилизации, времени стерилизационной выдержки и наличия насыщенного
водяного пара как в стерилизационной камере, так и внутри стерилизуемых изделий и
упаковок с изделиями при их стерилизации в паровых стерилизаторах. При воздействии
насыщенного водяного пара на индикатор и соблюдении условий паровой стерилизации
индикаторная метка достигает цвета элемента сравнения или становится темнее его.
Метод Микулича. Основан на обесцвечивании посиневшей от йода бумажки, смоченной
крахмальным клейстером, когда крахмал под действием высокой температуре
превращается в декстрин. С йодом декстрин дает только слабое розовое окрашивание.
Недостатком метода является то, что разные виды крахмала при неодинаковой температуре
переходят в декстрин и обесцвечиваются.[часть текста, выделенная синим цветом,
удаляется]
Стерилизация эндоскопической аппаратуры.
Основными этапами стерилизации эндоскопических приборов и инструментов является
их механическая очистка, промывание, предстерилизационная обработка и стерилизация,
просушивание и хранение.

После окончания эндоскопического исследования с эндоскопа немедленно удаляют
загрязнения (желудочное, кишечное содержимое, слизь, кровь и пр.) механическим путем
с использованием моющих средств (тех же, что используются при обработке
инструментов). Каналы эндоскопа (биопсийный, операционный) обрабатывают
специальной щеткой, а также путем подачи в них достаточного количества раствора
моющего средства с воздухом.
Для обработки эндоскопов применяют 0,5% водный или спиртовой раствор
хлоргексидина биглюконата, 70% этиловый спирт, 2,5% раствор глутарового альдегида,
препарат «Сайдекс», 3% и 6% растворы перекиси водорода при температуре 20±20С.
Кроме метода погружения, возможно также 3-кратное протирание салфетками,
интенсивно смоченными в антисептическом растворе наружной поверхности рабочей
части эндоскопа (каналы эндоскопа заполняются антисептическим раствором на 15 мин.).
Части эндоскопа обрабатывают растворами антисептиков путем погружения в
эмалированную или стеклянную емкость, закрытую крышкой. В последние годы появились
новые, так называемые сверхгерметичные модели фиброскопов, которые можно полностью
погружать в антисептический раствор.
Стерилизацию эндоскопической аппаратуры можно также проводить в камере газовой
стерилизации с использованием окиси этилена или смеси окиси этилена и бромида
метилена.
Подготовка рук к операции.
К классическим способам обработки рук относятся способы Фюрбрингера, Альфельда,
Спасокукоцкого-Кочергина. Способы Фюрбрингера и Альфельда
имеют лишь


историческое значение. Способ Спасокукоцкого-Кочергина может быть использован как
вынужденный, когда не представляется возможность применить современные методы.
Способ Спасокукоцкого-Кочергина.
1 этап – обычное мытье рук теплой водой с мылом в течение 1 мин.
2 этап – тщательное мытье рук марлевой салфеткой в двух тазах с 0,5% раствором

нашатырного спирта (по 3 мин в каждом тазу).
3 этап – осушивание рук стерильным полотенцем или салфеткой.
4 этап – обработка рук салфетками, смоченными 96% спиртом в течение 5 мин (дважды по
2,5 мин), ногтевые ложа и складки кожи пальцев смазывают 5% спиртовым раствором йода.
Современные способы обработки рук предусматривают их очистку путем мытья
проточной водой с мылом или с помощью жидких моющих средств (рис. 9.) и
последующую обработку химическими антисептиками (рис. 10.).
Обработка рук первомуром. Первомур – смесь муравьиной кислоты и перекиси
водорода, при взаимодействии которых образуется надмуравьиная кислота, оказывающая
сильное бактерицидное действие. Обработка рук предусматривает их мытье салфетками в
тазу с раствором первомура в течение 1 мин, затем руки осушивают стерильными
салфетками.
Обработка рук хлоргексидина биглюконатом. Для обработки рук готовят 0,5%
спиртовой раствор. Предварительно моют руки проточной водой с мылом, осушивают
стерильными салфетками, а затем в течение 2-3 мин протирают марлевым тампоном,
смоченным приготовленным раствором.
Обработка рук препаратами АХД, евросепт. Эти средства
содержат такие
антисептики, как этинол, хлоргексидин, эфир полиольной жирной кислоты. Несколько
миллилитров раствора выливают на руки и протирают кожу рук до средней трети
предплечий дважды по 2-3 мин.
Обработка рук может быть произведена путем протирания кожи 96% этиловым спиртом
дважды по 5 мин (способ Бруна) или 2% спиртовым раствором йода в течение 3 мин.
Ускоренные способы обработки рук применяют в амбулаторной практике или в
вынужденных (например, в военно-полевых) условиях. Для ускоренного обеззараживания
рук используют пленкообразующий препарат церигель, обладающий сильным
бактерицидным действием. Руки моют водой с мылом, тщательно осушают. На ладонь
наливают 3-4 мл циригеля и тщательно в течении 10 с смачивают им пальцы, ногтевые ложа
и валики, кисти и нижнюю часть предплечья. В течение 2-3 минут на коже образуется
плёнка циригеля обладающая защитными и бактерицидными свойствами. По окончании

операции плёнка легко снимается марлевыми шариками, смоченными спиртом.


Рис. 9. Предварительное мытьё рук под проточной водой.

Рис. 10. Обработка рук в тазу с раствором первомура.
Подготовка операционного поля.
Обработка операционного поля по Филончикову-Гроссиху состоит из 4 обязательных
смазываний кожи 5% спиртовым раствором йода:
1.
Широкая обработка до укрывания операционного поля стерильным бельем.
2.
Обработка после наложения стерильного белья (перед разрезом).
3.
Обработка перед наложением швов.
4.
Обработка после наложения швов.


Для обработки операционного поля используют такие препараты йода, как йоданат,
бетадин.
При непереносимости йода кожей у взрослых и у детей обработку операционного поля
проводят 1% спиртовым раствором бриллиантового зеленого (способ Баккала).
Для обработки операционного поля также используют 0,5% спиртовой раствор
хлоргексидина, как и для обработки рук хирурга перед операцией.
Профилактика имплантационного инфицирования ран.
Под имплантацией понимают внедрение, вживление в организм человека различных
материалов, тканей, органов, протезов. При внедрении микрофлоры с имплантируемым
материалом (имплантационное инфицирование организма) она находится в организме
человека в течение всего периода пребывания имплантата. Последний, являясь инородным

телом, поддерживает развившийся воспалительный процесс, лечение которого будет
безуспешным до тех пор, пока не произойдет отторжение или удаление имплантата
(лигатуры, протеза, органа и пр.).
К материалам, имплантируемым в организм человека, относятся: шовный материал,
металлические скрепки, скобки, а также протезы сосудов, клапанов сердца, суставов,
полотно из лавсана, капрона и других материалов, ткани человека и животных (сосуды,
кости, твердая мозговая оболочка и пр.), органы (почка, сердце, печень и пр.), дренажи,
катетеры, шунты кава-фильтры, сосудистые спирали и пр.
Все имплантаты должны быть стерильными. Стерилизация их проводится различными
способами в зависимости от вида материала: γ-излучение, автоклавирование, химическая,
газовая стерилизация, кипячение. Как правило, современные протезы выпускаются в
специальных упаковках, стерилизованные в заводских условиях (γ-излучением).
Наибольшее значение в возникновении имплантационной инфекции имеет шовный
материал. Различают рассасывающиеся (кетгут, хромированный и посеребренный кетгут,
дексон, викрил, оксилон и др.) и
нерассасывающиеся (шелк, капрон, лавсан,
хлопчатобумажные и льняные нити, дакрон, фторлон, металлические скрепки, скобки,
проволока и др.) материалы для швов.
Нагноение ран происходит значительно реже при использовании шовных материалов,
обладающих антимикробной активностью за счет введенных в их структуру
противомикробных препаратов. Синтетические нити, содержащие антисептические
средства, кроме соединения тканей, оказывают антибактериальное действие.
В современных условиях шовный материал стерилизуют в заводских условиях
различными способами (в зависимости от вида материала): излучением,
автоклавированием или кипячением. Шовный материал выпускают и стерилизуют в
специальной упаковке или в ампулах, которые хранят при комнатной температуре и
используют по мере необходимости.
При необходимости шелк, капрон, лавсан, лен, хлопок можно стерилизовать по способу
Кохера. Это вынужденный метод, и он предусматривает предварительную тщательную
механическую очистку шовного материала горячей водой с мылом. Мотки с шовным

материалом моют в мыльной воде не менее 10 мин, прополаскивают в чистой воде,
высушивают стерильным полотенцем и наматывают на специальные стеклянные катушки,
которые помещают на сутки в эфир для полного обезжиривания, после чего перекладывают
в банки с 70% спиртом на такой же срок. После извлечения из спирта шелк кипятят в
течение 10-20 мин в растворе сулемы (1:1000) и перекладывают в банки с 96% спиртом
(хранение). Синтетические нити можно стерилизовать кипячением в течение 30 мин.
Кетгут не подлежит термической обработке, в заводских условиях его стерилизуют – γлучами. Однако при необходимости можно простерилизовать кетгут в больничных
условиях. Стерилизация кетгута химическим способом предусматривает его
предварительное обезжиривание в эфире в течение 24 ч. При стерилизации по Клаудиусу
эфир из банки сливают и заливают кетгут на 10 суток водным раствором Люголя, затем
заменяют этот раствор свежим и оставляют в нем кетгут еще на 10 суток. После этого


раствор Люголя заменяют 96% спиртом. Через 4-6 суток проводят посев на стерильность.
Метод Губарева (модификация метода Клаудиуса) предусматривает стерилизацию кетгута
не водным, а спиртовым раствором Люголя.
Профилактика имплантационной инфекции при трансплантации органов и тканей
предусматривает их забор с тщательным соблюдением требований асептики (подготовка
рук и одежды хирургов, стерильное операционное белье, обработка операционного поля,
стерилизация инструментов и пр.) Орган извлеченный в стерильных условиях (после
промывания его стерильным раствором), помещают в специальный стерильный
герметичный контейнер, обложенный льдом, и доставляют к месту трансплантации.
Контрольные вопросы к занятию:
1.
Способ обработки рук по Спасокукоцкому-Кочергину.
2.
Способ обработки рук первомуром.
3.
Способы экстренной обработки рук.
4.

Обработка операционного поля по Филончикову-Гроссиху.
5.
Методы контроля стерильности рук хирурга.
6.
Обработка операционного поля по Баккалу.
7.
Методы стерилизации, используемые в медицине?
8.
Как стерилизуется колющий и режущий документ?
9.
Чем отличается стерилизация от дезинфекции?
10.
Что такое предстерилизационная обработка инструментов?
11.
Способы и правила укладки биксов?
12.
Методы контроля за стерильностью?
13.
Назовите температурные режимы стерилизации в сухожаровом шкафу.
14.
Назовите режимы стерилизации белья в автоклаве.
15.
м) Как осуществляется стерилизация инструментов с оптикой (лапароскопы,
торакоскопы, эндоскопы и др.)?